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时间:2018-05-08
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1、活化Notch2信号促进高糖条件下破骨细胞分化的体外研究的论文[摘要]目的探讨活化notch2信号对高糖条件下核因子κb受体活化因子配体(rankl)诱导破骨细胞分化的影响, 初步明确notch2信号在高糖条件下破骨细胞分化中的作用。方法体外培养小鼠破骨前体细胞,在高糖条件下采用rankl刺激破骨前体细胞。实验分为葡萄糖和甘露醇等渗对照组,每组设5个浓度(0、5、10、20、40mmol·l-1), 通过实时定量聚合酶链反应检测notch2基因的表达水平,抗酒石酸酸性磷酸酶(trap)染色检测破骨细胞分化情况。构建含notch2细胞内片段(i2
2、)的病毒载体(pmx-i2),转染包装细胞,收获病毒上清液感染破骨前体细胞;将病毒载体分为i2-oe(i2过表达)和empty(仅感染pmx载体)两组,通过蛋白质印迹法检测i2蛋白的表达水平;并在高糖条件下(20、40mmol·l-1)用rankl刺激i2-oe和empty组,设甘露醇等渗对照组,用trap染色检 测破骨细胞分化情况。结果rankl诱导破骨细胞分化过程中,葡萄糖浓度为20、40mmol·l-1时,破骨细胞数分别为110.3±6.8和72.0±8.0,notch2相对表达量分别为1.65±0.23和1.10±0.11;20、40mm
3、ol·l-1甘露醇组的破骨细胞数分别为152.7±7.0和157.0±12.5,notch2相对表达量分别为2.82±0.28和2.42±0.27,组间差异有统计学意义(p<0.05)。 活化notch2信号后,葡萄糖浓度为20、40mmol·l-1时,i2-oe组破骨细胞数分别为206.7±7.8和178.3±11.5,empty组分别为102.3±8.7和76.0±10.1,组间差异有统计学意义(p<0.05)。.结论活化notch2信号可促进高糖条件下破骨 细胞的分化。 [关键词]notch2信号;高糖;破骨细胞分化 [中
4、图分类号]q25[文献标志码]a[doi]10.3969/j.issn.1000-1182.2012.06.007 研究[1-2]发现:破骨细胞不仅是唯一能进行骨吸收的细胞,而且是参与牙槽骨组织改建的主要功能细胞。破骨细胞来源于骨髓造血干细胞,由单个核前体细胞融合而成。在破骨前体细胞向破骨细胞分化过程中,不仅受到包括核因子κb受体活化因子配体(receptoractivatorofnuclearfactorkappabligand,rankl)激活的notch2在内的多种信号传导通路的调控[3-4],而且受到包括血糖浓度在内的多种微环境因素的调控
5、[5]。目前,有关notch2信号在高糖条件下对破骨细胞分化情况的影响还不清楚。因此,探讨高糖条件下活化notch2信号对破骨细胞分化的影响,不仅可以明确notch2信号在糖尿病状态下牙槽骨改建中的作用,并且可以为寻找糖尿病性牙周炎的治疗方法提供新思路。 1材料和方法 1.1材料和试剂 293t细胞;α-mem、dmem、特级胎牛血清、聚凝胺(polybrene)(sigma公司,美国),rankl、巨噬细胞集落刺激因子(macrophagecolonystimulatingfactor,m-csf)(peprotech公司,美国);pmxs
6、(cellbiolabs公司,美国);lipofectamim2000、trizol试剂(invitrogen公司,美国),sybrgreen试剂盒(takara公司,日本),notch2细胞内片段(intracellu-larfragmentofnotch2,i2)抗体(cellsignaling公司,美国),t-per组织蛋白提取试剂和bca蛋白分析试剂(pierce公司,美国);聚偏二氟乙烯(polyviny-lidenedifluoride,pvdf)膜(millipore公司,德国)。 1.2细胞培养 取4周龄sd雄性大鼠,断颈处死,
7、无菌条件下分离完整的股骨和胫骨,暴露髓腔后用α-mem培养基(含10%胎牛血清)冲洗骨髓腔数次至骨干发白为止,然后接种于10cm大小的培养皿中,在标准条件(饱和湿度、5%co2、37℃)下培养12h后收集非贴 壁细胞,1500r·min-1(离心半径15cm)、37℃离心 5min,弃上清液,视为破骨前体细胞[3],加入m-csf (20ng·ml-1)和rankl(30ng·ml-1)诱导其向破骨细胞分化。293t细胞用dmem培养液培养。 1.3高浓度葡萄糖刺激 按照浓度依次增高的顺序,设置0、5、10、20、 40mmol·l-1
8、共5个葡萄糖梯度,同时设置相对应的0、5、10、20、40mmol·l-1甘露醇梯度,作为等渗对照。 1.4含i2基因的
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