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时间:2020-03-20
《临床医学论文重组结核分枝杆菌多表位肽的免疫原性研究.doc》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在工程资料-天天文库。
1、临床医学论文•重组结核分枝杆菌多表位肽的免疫原性硏究作者:娄加陶,周晔,吴传勇,陈燕,蒋天舒,陈波,谷明莉,仲人前,邓安梅【摘要】冃的探讨纯化的重组结核分枝杆菌多表位肽激发细胞毒性T淋巴细胞(CytotoxicTlymphocyte,CTL)免疫应答的能力,为新型结核疫苗的设计打下基础。方法通过细胞增殖和细胞毒性实验,硏究纯化的重组表达多表位肽刺激外周血单个核细胞(PBMC)产生的增殖反应和细胞毒活性,初步鉴定重组多表位肽的免疫原性。结果以刺激系数(SI)〉3为界,多表位肽(10“mol)能刺激全部10例HLA
2、A*0201阳性(A2+)结核菌素阳性(PPD+)健康个体的PBMC发生增殖,S■[为46.2±5・6;增殖反应明显高于单肽(平均S■[为10.2±2.3)以及PPD(平均SI为15.6±3.6)弓[起的细胞增殖反应(P<0・01)。在多表位肽诱导的CTL细胞毒活性分析中以负载抗原肽(10//mol)的T2细胞作为靶细胞,多表位肽诱导的CTL作为效应细胞,多表位肽能诱导全部的10例A2+PPW健康个体中CTL杀伤活性,平均活性分别为(86.2±9・6%),显著高于单肽[平均为(25.4±3.6)%]和PPD
3、[平均为(22.6±2.8)%](P<0.01)。结论重组优化多表位肽在细胞水平具有较好的免疫原性,能有效刺激PBMC产生细胞增殖反应和细胞毒活性。【关键词】结核分枝杆菌;多表位肽;疫苗抗结核病的保护性免疫机制冃前仍不清楚,但细胞免疫尤其是循环及感染部位的T细胞应答被认为起着重要作用。CD8+T细胞在抗结核感染屮起着重要而独特的作用‘尤其是近來AIDS和肺结核的重叠感染频率增加,因吐设计以CTL表位为基础,诱导机体产生保护性CTL免疫应答,从而预防和治疗肺结核的疫苗越来越受到重视。但实践证明单纯利用CIL表
4、位制成的肽疫苗或DNA疫苗,特异性CTL免疫应答的水平一般较低,效果都不甚理想。为了获得高效而特异的保护性CTL免疫应答,需要对单纯的CTL表位疫苗进行新的设计和改造。我们设计了含有可引导表位肽进入抗原提呈细胞的“木马肽”序列以及PADRE泛Th表位,并采用了高尔基体内固有肽酶furin识别序列作为表位接头的“串珠式”多表位肽M6[l]。有硏究表明,PPEM•健康个体作为潜伏性结核分枝杆菌感染者,体内持续存在的抗原引起相应的免疫应答而产生的大量抗原特异性T细胞是机体免疫性保护作用的基础。因此其PBMC对结核分枝
5、杆菌抗原的应答,可作为硏究抗结核分枝杆菌保护性•免疫的良好模型[2~5]。这样便可以采用PPEM■健康个体的PBMC对候选表位或抗原的免疫反应性来验证其免疫原性。本硏究探讨纯化的重组结核分枝杆菌多表位肽激发CTL免疫应答的能力,为新型结核疫苗的设计捉供良好的方案、奠定良好的基础。1材料与方法1.1硏究对象10例HLAA*0201阳性健康志愿者,6例HLAA*0201阴性健康志愿者,均为PPD+。留取外周血20ml,肝素抗凝。1.2试剂和试剂盒LPS、人重组IL2、PPD、人重组GMCSF、人重组IL-4购自R&
6、D公司;FTTC标记的抗CD3、抗CD8、抗HLA.A2流式单克隆抗体均为Caltag公司产品;HLAA2高分辨SSPPCR试剂盒购自OneLamda公司;时间分辨荧光DELFIA细胞增殖(AD0200)与细胞毒性(AD0016)检测试剂盒均购自WailacOy公司;A或5A(242〜250aa.KLTANNTRV)由上海生工生物工程技术有限公司合成;T2细胞株由上海长征医院临床实验诊断科保存。1.3HLA分型先以鼠抗人HLAA2单克隆抗体(BB7.2)进行HLAA2流式细胞仪初步筛选,然后再以HLAA2高分辨
7、SSPPCR试剂盒进一步确认其A*0201亚型。1.4抗原肽诱导CTL制备用密度梯度离心法分离得到外周血单个核细胞,种于6孔细胞培养板,在含10%FCS的RPMT1640培养基中,37°C5液02孵育1.5h。收集悬浮细胞,以10%二中亚砚90%小牛血清保存于液氮备用。贴壁细胞为抗原提呈细胞-树突状细胞(DC)前体细胞,补充含GMCSF(1000U/ml),IL4(1000U/ml)及含10%FCS的RPMI1640培养液,37°C5KO2培养7d促其转化,需要时补充新鲜培养液。5d后,加入LPS(1mg/L)
8、培养2d后促迸DC成熟r照射使其失去增殖活性。将经过照射的DC分别与抗原肽、多表位肽、PPD(10zzmol/L)在培养液中,37°C5液D2共孵过夜。分别将1x105负载的DC与1x106自体PBMC种于含10%FCS的RPMI1640完全培养液的24孔细胞培养板,37°C5%CO2混合培养3d后,加入rIL2(20U/ml)继续培养10d‘进行细胞增殖实验和细胞活性检测。1.5细胞
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