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时间:2018-11-19
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1、采取改良SDS法对天麻花葶DNA提取研究论文.freelprovedSDSmethod【Abstract】TheDNAofGastrodiaelata.scapeprovedSDSmethod.TheextractedDNAinedbyultravioletabsorptiontestandagarosegelelectrophoresis.TheresultsshoprovedSDSmethodinatedpletely.Itcouldbeusedforanalysis.【KeyeDNA;DNAex
2、tracting从药材天麻花葶中提取到高质量的DNA.freelartspecTM3000DNA浓度的测定仪(Biorad公司)。“S”提取液、TE缓冲液、苯酚:氯仿(1∶1)、氯仿∶异戊醇(24∶1)、氯仿、异丙醇、3mmol/LNaAc10mg/mlRNaseA。植物材料为兰科天麻(GastrodiaelataBlume.)新鲜花葶。以野生型天麻和种植型天麻为实验对象,编号分别为1、2、3、4、5(其中1、2为大方GAP栽培品乌天麻,3、4、5为野生品乌天麻),由贵阳医学院王晓丽教授鉴定、提供。1
3、.2方法1.2.1天麻基因组DNA提取本研究在EdlEppendorf管中,迅速加入预热至65℃的“S”提取液750μl,经摇充分混匀,在65℃水浴中保温1~2h,其间颠倒混匀数次,取出,10000r/min离心10min;(3)加等体积的苯酚:氯仿(1∶1),轻轻摇匀,10000r/min离心10min,转移上清液;(4)加等体积的氯仿溶液,混匀后,10000r/min离心10min,转移上清液;(5)加0.6倍体积预冷的异丙醇,轻轻混匀,于-20℃静置30min;(6)用枪头小心挑出絮状DNA,加
4、150μl的70%乙醇冲洗2次;勾出的DNA,在通风橱中风干,加100~150μl1×TE,溶解;(7)加3~4μlRNaseA,37℃放置1~2h,用琼脂糖凝胶电泳检测RNA的去除情况,再加500μl1×TE缓冲液;重复(3)(4)过程,将(3)中的苯酚:氯仿(1∶1)用氯仿:异戊醇(24∶1)取代:取上清液加入1/10体积3MNaAc,混匀后,加入2倍体积的冰冻乙醇,于-20℃静置20min,沉淀DNA;加150μl70%乙醇洗脱2次,勾出的DNA,室温风干;加50~300μl1×TE溶液溶解DN
5、A,4℃下保存。1.2.2DNA的质量检测用0.8%琼脂糖凝胶电泳,EB(溴化乙啶)染色,进行DNA质量检测,电泳缓解液为1×TAE,电压为80V,电泳1~2h,然后在紫外凝胶成像系统下观察摄像。1.2.3DNA的浓度检测取2μlDNA溶液用1×TE稀释100倍,在核酸分析仪上,测定在260nm/280nm波长下的吸收值,根据A260/A280判断DNA纯度,A280值计算DNA产率。并计算OD值(A260/A280),调整所有DNA的量至200~500ng/μl左右。2结果与分析本试验采用SDS法提
6、取天麻基因组DNA,SDS法操作简单,温和,可提取到较高分子量DNA,经DNA的质量检测显示,其分子量太小约23.2kb,点样孔不发亮,DNA主带清晰,无弥散带,无明显的RNA带,说明天麻的RNA、蛋白质、多糖以及其他次生代谢物质去除的比较干净,纯度较高(见图1)。经DNA的浓度测定显示DNA浓度在3.0mg/g以上,A260/A280值均在1.75以上(见表1),说明质量较高。图1天麻DNA琼脂糖凝胶电泳结果表1DNA样品的浓度测定结果3讨论3.1天麻块茎含有大量的糖类、酚类以及蛋白质等物质,如果选
7、用干品药材,由于老化和贮存时间较长,植物材料中多糖和酚类含量较高,从中提取得到的DNA,常会和多糖、酚类形成共沉淀而成胶冻状或黄褐色,严重影响了DNA的得率和质量。在天麻生活史中,大部分阶段都与蜜环菌共生,因此选择适当的阶段和部位对DNA的提取也很重要。由于初生块茎的皮层细胞内有蜜环菌,故用初生块茎提取DNA时,要去除蜜环菌,最好取生长点部位的组织,这样既可避免蜜环菌DNA污染,又可得到产量较高的DNA。新鲜和幼嫩的植物材料因其含有较完整的DNA,从天麻花葶的幼嫩部分提取DNA是最理想的部位。一方面花
8、葶没有蜜环菌侵染,同时花葶又是形成花和花序的生长点部分,细胞中含有丰富的DNA。从该部分提取DNA,通常能获得产量高、质量好的DNA。但从花葶提取DNA,因受天麻生长季节的限制,通常只有当天麻开花时才能取材。3.2从不同的植物材料中获得基因组DNA只是在得率和纯度以及对后续反应的影响等方面有所差异,但因各方法本身具有不同的特点和优势,故针对不同的植物材料或同一样本的不同部位,应选择最适合的方法来应用[4~6]。本实验采用改良的SDS法提取天麻基因组总DN
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