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时间:2018-11-09
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1、丁酸钠诱导Raji细胞基因表达的变化作者:张海涛伍俊汪亚君郭黠冯哲玲梁念慈朱振宇马涧泉【摘要】目的分析丁酸钠诱导Raji细胞的基因表达变化,探讨丁酸钠诱导凋亡作用机制。方法限制性显示PCR技术(RestrictionDisplayPCR,RDPCR)分析基因表达变化,利用互联网提供的GenBank核酸数据库分析比对获得的差异表达序列。结果获得14条差异表达序列,其中6条是对照组高表达序列,8条是实验组高表达序列。结论采用RDPCR技术可以快速简便地分析药物诱导基因表达变化。分析表达差异的序列发现,丁酸钠可诱导促进细胞凋亡的基因表达,降低
2、肿瘤细胞高表达的基因表达。【关键词】限制性显示PCR技术;丁酸钠;凋亡;基因表达 ChangeofGeneExpressioninRajiCellsInducedbySodiumButyrate Abstract:ObjectiveThisstudyechanismofapoptosisinducedbysodiumbutyrate.MethodsThechangeofgeneexpressionbutyrate.ConclusionThechangeofgeneexpressioninducedbydrugscouldbeanal
3、yzedbyRDPCRmethodsquicklyandsimply.Geneexpressionthatpromptedcellapoptosisbutyrateorcellsbutyrate;Apoptosis;Geneexpression 0引言 Raji细胞是悬浮状态生长的,但我们前期研究发现Raji细胞在丁酸钠的处理下可由悬浮生长状态转变为贴壁生长状态,伴随有细胞凋亡现象的发生[1]。我们研究小组拟通过RDPCR显示mRNA表达差异来揭示丁酸钠诱导Raji细胞凋亡时基因表达的变化,试图寻找造成细胞发生形态学变化的主要基因,
4、探讨丁酸钠作用的可能机制。 1材料和方法 1.1主要试剂丁酸钠(SB),溴化乙锭(Sigma公司);DNA回收试剂盒(QIAquickGelExtractionKitProtocol,德国QIAGEN公司);mRNA纯化试剂盒(OmegaBiotek公司),限制性内切酶Sau3AI,DNA连接试剂盒,LATag酶,RNasin,T4DNA连接酶,dNTP,PMD18TVector,JM109细菌(大连宝生物公司);丙烯酰胺,N,N’–甲叉双丙烯酰胺,琼脂粉,琼脂糖,Tag酶,低熔点琼脂糖(上海生物工程公司);胰蛋白胨,酵母提取物(英
5、国OXIOD公司);Tris饱和酚(鼎国生物工程公司);逆转录酶,TRIzol试剂,DEPC(Invitrogen公司);RPMI1640(Gibco公司);小牛血清(杭州四季青公司);100bpDNALadder(Bebco公司);氯仿,异丙醇(国产分析纯)。 1.2细胞培养Raji细胞株(来源于中山大学肿瘤防治中心)以含10%小牛血清的RPMI1640培养液于5%CO2中培养。 1.3细胞mRNA的提取将生长状况良好的Raji细胞接种在6孔培养板中,细胞浓度为1.0×106/ml,加入3mmol/L丁酸钠,37℃、5%CO2培养。总
6、RNA的提取按照Invitrogen公司提供的TRIzol试剂说明书进行操作。最后加30μlDEPC处理水溶解总RNA。参照mRNA纯化试剂盒说明书(OmegaBiotek公司)操作,从总RNA中纯化mRNA。 1.4从mRNA反转录成为cDNA及双链cDNA末端平滑化逆转录按照Invitrogen公司的说明书进行逆转录,mRNA约2μg,dNTP0.5mmol/L,OligdT150.1μmol/L,65℃,5min,加MMLV200U和酶反应缓冲液,37℃延伸时间75min。cDNA样品20μl,70℃,10min。加入5μlT4
7、DNAPolymerase,5μl10×T4DNAPolymeraseBuffer,5μl0.1%BSA,3.5μl2.5mmol/LdNTP,12.5μl灭菌水,轻柔混匀。37℃反应5min。加入25μlEDTA(pH8.0)和25μl10%的SDS,轻柔混匀,停止反应。加入100μl酚/氯仿溶液,振荡,混匀。10000g离心1min,液相分离,将上层水相转移至另一微量离心管中。加入1/10体积3mol/LNaAc(pH5.2)、2.5倍体积预冷的无水乙醇,混匀。-20℃,静置30min。4℃离心13000g×10min,弃上清,75%乙
8、醇洗沉淀1~2次,晾干。 1.5cDNA的酶切cDNA溶于20μl水中,定量后,取大约2μg进行酶切反应。16USau3AI,37℃进行酶切反应,时间不少于2h。 1.6接头
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