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时间:2018-05-06
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1、苦参碱诱导人肝癌细胞株HpG2.2.15凋亡的实验研究【关键词】HpG2.2.15细胞株;苦参碱;凋亡;凋亡蛋白乙肝病毒与肝癌发生密切相关,两者相关率高达80%,在肝细胞癌中,血清HBV阳性感染率为94.78%;HBsAg阳性携带率为89.57%[1]。HBV-DNA与肝细胞DNA紧密结合在一起,乙肝病毒产生的X蛋白在肝癌的发生和发展中起着重要的作用。苦参碱可诱导人肝癌细胞株HpG2凋亡,应用全基因组表达谱芯片检测差异表达基因,苦参碱可改变人肝癌细胞株HpG2细胞基因谱,调控凋亡基因的表达,在苦参碱治疗的C6细胞株
2、中,57个基因表达上升2倍,而11个基因至少下调2倍[2,3]。苦参碱可诱导l∶50mg,江苏吴中医药集团有限公司,批号070604。MTT和G418购自sigma公司,胰蛋白酶和Fas抗体购于sigma公司。DAB试剂盒购自天津灏洋生物公司,ABC-Kit试剂盒购自sigma公司。兔抗人HBxAg多克隆抗体(HBx99rabbitpdycolonalABserum,Rabbit2)由本实验室保存。 1.3仪器酶标仪(美国Bio-Rad公司680),BDFACSCanto流式细胞仪,电泳仪(美国Bio-Rad公司
3、),紫外透射仪(美国Bio-Rad公司)。 2方法分为治疗组、对照组和空白组。对照组采用顺铂。 2.1MTT实验法①MTT用PBS配制成5mg/ml。②细胞悬液以104/孔接种于96孔培养板(200μl/孔),治疗组每孔加入苦参碱10μl(200μg/ml),对照组DDP10μl(20μg/ml),空白组加入培养液10μl/孔。③在37℃,5%CO2的培养箱中培养24h。④每孔加入MTT20μl,每次3孔,37℃作用4h。⑤吸弃各孔中的上清,每孔加入DMSO150μl,振荡,紫蓝色沉淀充分溶解,用酶标仪在波长5
4、40nm处测定吸光度A值。⑥上述试验重复4次。 2.2流式细胞学检测法①对数生长期的细胞,胰酶消化后,以5×104/ml的密度接种,贴壁后加入DMEM培养基培养24h,治疗组加入苦参碱10μl(200μg/ml),对照组加入顺铂10μl(20μg/ml),空白组加入等体积的培养液。②继续培养48h,胰酶消化成单细胞悬液,冰PBS洗涤2次,800r/min离心5min,弃上清,缓慢加入-20℃预冷的70%乙醇,4℃过夜。③取细胞悬液,PBS洗涤,1600r/min离心5min后,弃上清。PI染液1.0ml染30mi
5、n,混合液经过300目滤网以除去杂质,620nm检测。每样本收集多于10000个荧光信号。④在流式细胞仪上作Fas基因表达分析。将细胞培养后直接将细胞送至流式细胞室做检查。 2.3RT-PCR试验方法 2.3.1引物序列Fas-F5'-TCCTACCTCTGGTTCTTAC-3'Fas-R5'-CTCTTCACTTCCTCTTTGC-3'Beta-actinF5'-ACTCTTCCAGCCTTCCTT-3'Beta-actinR5'-ACTCGTCATACTCCTGCT-3' 2.3.2逆转录过程(RT)试剂
6、:5×AMVbufferRNA酶抑制剂随机引物DNTPsAMVRT反应体系20μl灭菌的DEPC水10.3μl5×AMVbuffer4μlRNA抑制剂0.4μlOligo(DT)1μldNITs1.3μlRAN2μlAMV1μl 2.3.3反应条件37℃90min,95℃10min,4℃pause。PCR反应体系25μldH2O14μl10×PCRBuffer2.5μldNTPs1.2μlPrimer11.2μlPrimer21.2μlTemplate4μlTaq酶0.8μl 2.3.4PCR反应程序95℃4m
7、in→95℃40s→54℃30s→72℃30s→72℃5min→4℃pause 从图2中可看出,顺铂和苦参碱组的吸光度值随着时间的延长而减少,细胞数量逐渐减少,顺铂和苦参碱具有诱导人肝癌HpG2.2.15细胞株凋亡的作用。 3.2细胞凋亡细胞凋亡的实验结果见图3。经χ2检验,χ2=8.00,P=0.000,按a=0.05水准,各组诱导细胞凋亡有差别。苦参碱诱导细胞凋亡率为57.9%。结果见图4。 3.3苦参碱对Fas蛋白的影响诱导Fas蛋白的表达。见图5。 经χ2检验,χ2=1.41,P=0.000,按a
8、=0.05水准,在诱导Fas基因表达具有统计学意义。苦参碱诱导Fas基因的表达率(4.11%)要优于DDP(3.7%)。见图6。 3.4苦参碱对Fas基因的影响Fas表达产物是495bp,HpG2.2.15细胞株Fas基因表达较弱,HpG2有明显Fas基因表达。苦参碱可以诱导HpG2.2.15细胞株的Fas基因表达,其作用要低于内毒素。结果见图7~8。
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