实验四尼龙固定化木瓜蛋白酶

实验四尼龙固定化木瓜蛋白酶

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时间:2018-12-07

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1、实验七尼龙固定化木瓜蛋白酶(黄色字体不用抄)一.目的和要求1、学习和理解尼龙固定化木瓜蛋白酶基本原理。2、熟练掌握尼龙固定化木瓜蛋白酶基本技术。进一步理解其和水溶性酶比较所独有的优点。二.实验原理通过物理或化学的方法,将水溶性的酶与水不溶性的载体结合,固定在载体上,在一定的空间范围内进行催化反应的酶称为固定化酶。酶的固定化方法有:吸附法(物理吸附、离子吸附)、包埋法、共价键结合法、交联法。本实验尼龙同定化木瓜蛋白酶属共价键结合法。尼龙长链屮的酰胺键,经HC1水解后,产生游离的-NH基,在一定条件下与双功能试剂戊二醛中的•一个-CHO

2、缩合,戊二醛的另一个-CHO则与酶巾的游离氨基缩合,形成尼龙(载体)一戊二醛(交联剂)一酶,即尼龙固定化木瓜蛋白酶。三.实验材料、试剂及仪器3.1材料尼龙布(86)或(66),1000,剪成3X3cin3.5mol/LHC1溶液(每组30mL)0.2mol/L硼酸缓冲液(pH8.4)(每组30mL)5%戊二醛(以0.2mol/LpH8.4硼酸缓冲液配制,每组30mL)0.lmol/LpH7.2磷酸缓冲液(每组250mL)0.5mol/LNaCl溶液(用0.lmol/LpH7.2磷酸缓冲液配制)(每组150mL)木瓜蛋白酶溶液(lmg

3、/mL,用0.lmol/LpH7.2磷酸缓冲液配制)(每组15mU:分别称取50mg木瓜蛋白酶粉末五组,每组编号为A、B、C、D、E,分别加0.5mL激活剂,分别研磨2min、6min、lOmin、14min、18min,用0.lmol/LpH7.2磯酸缓冲液溶解,定容至50mL。激活剂(用0.lmol/LpH7.2磷酸缓冲液配制,含半胱氨酸lOmmol/L,EDTAlmmol/L)(每组50mL)。3.2试剂(1)甲醇溶液(含18.6%03(12和18.6%水)(每组50mL)(10)20%三氯乙酸(用蒸馏水配制)(每组40mL)

4、3.3仪器恒温水浴锅,紫外分光光度计,冰箱。n.实验步骤4.1固定化酶的制备(1)每组取5块尼龙布洗净,凉干。用含18.6%CaCh和18.6%水的甲醇溶液在50°C下保温10秒钟左右,并轻轻搅拌至尼龙布发粘,取出用水冲去污物,用吸水纸吸干。(2)尼龙布用3.5mol/LHC1在室温水解45min,用水洗至pH中性。(3)尼龙布用5%戊二醛在室温下浸泡偶联20mino(4)取出尼龙布,川0.lmol/LpH7.2磷酸缓冲液反复洗去多余的戊二醛,吸干,立即用酶液(lmg/mL)在4°C下固定3.5h(酶液用量每块布为ImL)。(5)从

5、酶液屮取出尼龙布(保留残余酶液作测定用),用0.5mol/L的NaCl(用0.lmol/LpH7.2磷酸缓冲液配制)洗去多余的酶蛋白,即为尼龙同定化酶。4.2酶活力测定(1)溶液酶活力测定取0.2mL酶液,加入1.8mL激活剂,37°C预热10min,加入37°C预热10min的1%酪蛋白溶液ImL,准确反应10min,加入20%三氯乙酸2mL反应终II:酶反应。对照管先加入20%三氯乙酸溶液,后加酪蛋白溶液,其它与测定管相同。过滤,清液于280nm波讼下测定光吸收值(表11-1)。在上述条件下,每lOmin增加0.001个光吸收值

6、为1个酶单位(U)(以下同)。试剂溶液酶固定化酶残留酶CK12CK12CK12激活剂(mL)1.81.81.82.02.02.01.81.81.8酶液/固定化酶(mL或块)0.20.20.21块1块1块0.20.20.237V保温5min37°C1%酪蛋白(inL)—11-11—1137°C反应10min20%TCA222222222农111酶活力测定(mL),摇匀1%酪蛋白111(inL)过滤八280nm(2)残留酶活力测定同溶液酶活力测定。(3)固定化酶活力测定取一块尼龙布固定化酶,加入2.0mL激活剂,其余步骤与溶液酶测定相同

7、。五.数据处理及计算活力回收=(固定化酶总活力数/溶液酶总活力数)X100%相对活力=[固定化酶总活力数/(溶液酶总活力数一残留酶活力数)]X100%六.注意事项6.1尼龙布的处理是实验成败的关键,既要让其充分的活化,又不能使其破碎。6.2同定化酶液浓度最好为0.5-1mg/mL,每块尼龙布用量不宜超过1mL。6.3酶活性测定的反应时间一定要准确。6.4过滤操作要规范。

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