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时间:2018-05-02
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1、刺参黏多糖对Hela细胞增殖分化的影响【关键词】刺参葡糖氨基聚糖类Hela细胞细胞增殖细胞分化 [ABSTRACT]ObjectiveToinvestigatetheeffectofStichopusjaponicusacidicmucopolysaccharide(SJAMP)onproliferationanddifferentiationofHelacellsanditscorrespondingmechanism.MethodsHelacellsicroscope.CyclinD1,CDK4,CmycmRNAexpressio
2、nsinedbyreversetranscriptionpolymerasechainreaction(RTPCR).ResultsAninhibitoryeffectofSJAMPedependentmanner.Electronmicroscopyobservationshootedcellsdifferentiation.SJAMPdecreasedthemRNAexpressionsofCyclinD1,CDK4andCmycgenes.ConclusionSJAMPmightinhibittheproliferationo
3、fHelacellsviadecreasingtheexpressionsofCyclinD1,CDK4,andinductthedifferentiationofHelacellsviadecreasingtheexpressionsofCmycgene. [KEYP)是由刺参体壁提取的一种动物酸性黏多糖[1]。经药理实验结果证明,SJAMP具有广谱抗肿瘤、抗凝血及增强机体免疫功能等活性[2,3],特别是其抗肿瘤作用日益受到重视。王振立等[4]研究结果显示,SJAMP可明显抑制肿瘤细胞DNA的合成从而抑制肿瘤生长,而对正常细胞的DN
4、A合成有明显促进作用,这有利于正常细胞的增殖,表明SJAMP对肿瘤细胞及正常细胞具有一定的选择性作用。本实验选择人宫颈癌细胞Hela系作为研究对象,探讨了SJAMP对Hela细胞增殖、分化的作用及其可能的作用机制。 1材料和方法 1.1材料 人宫颈癌细胞Hela系,青岛大学医学院微生物学实验室赠;SJAMP,中国海洋大学医药学院提取,相对分子质量122248,纯度99.5%;DMEM培养基、胰蛋白酶,GIBCO公司产品;胎牛血清,杭州四季青公司产品;TRIzol试剂,GIBCO公司产品;反转录试剂盒,Promega公司产品;TaqD
5、NA聚合酶,上海中科开瑞生物芯片科技股份有限公司产品;DNAMarker、Marker2000,Takara公司产品。BNP310恒温CO2培养箱,日本TABAIESOEC公司;PCR仪,Biometra公司;EAR400AT酶标仪,奥地利;JEM扫描电镜,日本JEOL公司;ViDAS21图像分析系统,德国欧波同公司;天能凝胶图像分析系统,上海天能科技公司。 1.2方法 1.2.1细胞培养Hela细胞常规培养于含有体积分数0.10胎牛血清,100kU/L青霉素和100mg/L链霉素的DMEM培养基中,置于37℃,体积分数0.05的C
6、O2培养箱中培养。 1.2.2SJAMP对Hela细胞增殖的作用观察采用MTT法。取指数生长期细胞加消化液消化制成单细胞悬液,计数、调整细胞浓度为1×107/L,取上述细胞悬液接种于96孔板,每孔200μL。每组做6个平行样品。37℃,体积分数0.05的CO2孵育过夜,使细胞贴壁生长。第2天换含不同浓度SJAMP(0.5、1.0、2.0、4.0、8.0g/L)的培养液,对照组换不含SJAMP的培养液,均置37℃,体积分数为0.05的CO2孵育。药物作用3d后,加入5g/L的MTT20mL,37℃孵育4h,去掉上清液,采用细胞内形成的蓝色
7、结晶溶解于150μLDMSO。酶联免疫检测仪测定570nm波长处各孔吸光度(A)值,按公式计算SJAMP对Hela细胞的抑制率。抑制率=(对照组A值-实验组A值)/对照组A值×100%。 1.2.3不同浓度SJAMP作用后Hela细胞的形态结构变化观察用浓度为0.8、1.2和1.6g/L的SJAMP培养液分别在细胞培养瓶中作用于Hela细胞1、3、5d,对照组Hela细胞正常生长1、3、5d,在相应时间点倒掉培养液,分别使用DHanks液冲洗3次,光学显微镜下观察细胞形态的变化。再将SJAMP处理过的Hela细胞收集、常规消化离心后,
8、经固定、脱水、包埋、固化、染色、切片等处理,在JEM1200EX透射电镜下观察。 1.2.4SJAMP对Hela细胞CyclinD1、CDK4和Cmyc的mRNA表达影响采用RTPCR
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