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时间:2018-05-01
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1、Aβ142诱导皮层神经元细胞凋亡的机制及通心络的干预作用:张志慧周【摘要】目的探讨Aβ诱导皮层神经元凋亡的机制及通心络的干预作用。方法原代培养的小鼠皮层神经,经Aβ142处理后,MTT判断神经元存活率,Hoechst33342染色、流式细胞仪检测检测神经元凋亡,ethodsTheneuronsurvival,apoptosisofneuronsinedbyR4000型酶标仪、胎牛血清(Sigma公司),培养基、胰蛋白酶(Trypsin,Sigma公司),噻唑蓝(MTT,Sigma),二甲基亚砜(DMSO,Sigma),caspase3抗体(SantaCruz)等。 1.2皮层原代
2、神经元培养 取怀孕14~16d昆明小鼠,75%乙醇浸泡消毒皮肤,取出胎鼠,无菌条件下断头取全脑,用眼科镊仔细剥除脑膜,切下双侧大脑皮层,剪碎,移入消化液中(0.125%胰酶,用0.01mol/LPBS配制),置37℃水浴箱中消化20min,每隔5~10min取出摇匀。待组织块下沉后,用巴氏滴管吸出上清液,加入含10%FBS(胎牛血清)的DMEM完全培养基2~3ml,静置5min终止胰酶消化。弃上清,将组织悬浮于完全培养基中,用尖端经火焰钝化的巴氏滴管缓慢吹打20~30次,待组织团块基本消失,静置数分钟,将上层细胞悬液经100目不锈钢网过滤,残余组织再加入含10%FBS的DMEM/F12
3、反复吹打,静置,悬液过滤。收集两次过滤的单细胞悬液进行计数,台盼蓝拒染法计数细胞活力。用含10%FBS的DMEM/F12(临用前添加L谷氨酰胺20μmol/L,葡萄糖3g/L)调整活细胞密度为1×106/L,接种于1%L多聚赖氨酸预包被的6孔或96孔培养板,每孔2ml,在37℃,5%CO2,95%空气及饱和湿度的细胞培养箱中孵育24h。细胞贴壁后,更换新鲜的含20%B27的无血清DMEM/F12,抑制胶质细胞的增殖。此后每隔3d换半液,培养至7~10d的神经细胞经神经元特异性烯醇化酶(NSE)免疫细胞化学(SABC法)鉴定,神经元占95%以上。细胞生长至7~10d可用于药物干预试验。
4、 1.3淀粉样蛋白的老化处理 将1mgAβ142溶解在1ml的DMEM培养基中,置于37℃孵箱中孵育7d,使蛋白凝聚,然后-20℃贮存备用。 1.4Aβ142损伤神经元的量效关系 将上述神经元细胞种植在96孔培养板中,待细胞生长状态良好时加入含不同浓度Aβ142的DMEM培养液,100μl/孔。第1组细胞的处理:细胞长至亚融合状态时更换培养基并加入Aβ142,终浓度依次为10、20、40、80、160μmol/L,培养24h,以不加Aβ142的细胞为阴性对照。第2组细胞的处理:细胞长至亚融合状态时更换培养基并加入Aβ142(终浓度为40μmol/L),于培养12、24
5、、36、48h终止培养,以不加Aβ142的细胞为阴性对照。终浓度为40mol/L作用24h适合建立细胞损伤模型。 1.5分组及药物处理 神经元细胞以106/ml密度接种于6孔板,实验分为①正常组:用5%FBS的DMEM培养基培养24h后进行检测;②模型组:细胞培养后,加入终浓度为40μmol/LAβ142作用24h诱导细胞损伤;③通心络组:细胞培养后,在加入Aβ前,分别加入终浓度为200、100、50μmol/L的通心络预处理4h,再加入终浓度为40μmol/LAβ142作用24h诱导细胞损伤。 1.6细胞的形态学观察 在倒置显微镜观察经各因素处理后神经元的形态学变化。
6、1.7MTT法检测细胞存活率 细胞经上法处理后,吸去上清液,在无菌条件下每孔加入5mg/mlMTT100μl,继续培养4h,小心吸取培养液保存,每孔加入200μl的DMSO溶液,反复振荡30min,直至MTT反应的蓝色结晶产物完全溶解。用酶标仪检测490nm和630nm波长处每孔样品的吸光度值。 2结果 2.1形态学观察 正常组皮质神经元培养7d后,胞体呈梭形或三角形,聚堆生长,相互交织成网状,折光性好。Aβ142损伤模型组细胞损伤严重。通心络各组均有改善,以大剂量为著(见图1)。 2.2对原代神经元细胞存活率的MTT检测 模型组与空白组原代神经元细胞存活率有显著差异(P&
7、lt;0.05),100、200μmol/L两个浓度组的通心络可提高原代神经元细胞存活率(P<0.05)(见表1)。 2.3Hoechst33342染色(荧光显微镜下观察)结果 正常组皮质神经元呈低蓝染色,胞核和胞膜完整,Aβ142损伤模型组细胞损伤严重,细胞呈亮蓝染色,有些细胞呈典型的凋亡形态。通心络各组均有改善,以大剂量为著(图2)。表1通心络对Aβ142原代神经元细胞存活率的影响(略) 2.4流式细胞仪检测凋亡
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