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时间:2021-04-20
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1、葡萄球菌肠毒素C纯化探究总结一、培养基及培养条件的优选二、用分子截留方法浓缩肠毒素原液三、用DEAE-纤维素(系Pharmacia产品)柱层析作第一步提取四、用SephadexG-75分子筛层析柱进一步纯化五、纯化前后SET-C的SDS-PAGE鉴定六、纯化后的SET-C分子量测定七、对SET-C纯化品的N末端氨基酸测定前言为了检测“金葡素”制剂中有效成份葡萄球菌肠毒素C(SET-C),我们对提纯SET-C方法进行了较为系统的研究。经多次试验,认为按四部法提取SET-C能获得较好效果,并对SET-C的某些生物学特
2、性作了探索。现总结如下:三、用DEAE-纤维素(系Pharmacia产品)柱层析作第一步提取一般要求DEAE-纤维素40~100目,临用前过筛,再以蒸馏水漂洗,去除细微粒子。用1%NaoH和和1%HCL交替处理后直至洗涤液呈中性。再用0.01mol/LPH5.4PB冲洗平衡,装柱。柱大小为4.1×42cm。装柱时切忌气泡进入,装好柱后用同一PB缓慢洗涤使整个柱内达到平衡,然后上样。即将上一步浓缩透析过的SET-C原液缓慢加入使全部入柱后。先用PH5.00.01mol/LPB洗涤,使有色液体流尽。其后作分管收集,每
3、10分钟收集一管,其量为7.5ml,对收集液逐管在OD280nm紫外分光自动检测仪测蛋白峰出现管数。其后相继换用PH6.6、0.06mol/LPB和PH6.8,0.2mol/LPB分步洗脱,洗速为45ml/hr,每管仍用OD280nm紫外分光自动检测仪测洗脱液蛋白吸收峰。并对各峰洗脱液合并,再用反相胶乳凝集试验(RPLA)检测是否有SET-C存在,合并蛋白峰。收集结果证明SET-C在第Ⅱ峰,结果见图1,并对Ⅱ峰用PEG浓缩至一定量,提供下一步纯化。图1:用DEAE-纤维素层析结果四、用SephadexG-75分子筛
4、层析柱进一步纯化对收集经DEAE-纤维素层析分离的第Ⅱ峰洗脱液合并,用PEG浓缩,将浓缩液置透析袋中,用0.01mol/LPH7.4PB透析平衡后,将第一步浓缩透析液再通过事先准备好的SephadexG-75分子筛柱(2.6×30cm)过柱。上样后用0.01mol/LPH7.4PB洗脱,洗脱液出现一个蛋白峰,用RPLA检测毒素即在此峰,收集Ⅰ峰混合,浓缩。结果见图2:图2:用SephadexG-75分子筛结果对截留后浓缩液及通过DEAE纤维素柱层析与SephadexG-75分子筛过柱后各项内容的变化情况见表1:
5、表1:SET-C的提纯及回收率检测内容项目体积(ml)蛋白量(mg/ml)总蛋白(mg)RPLA(mg/ml)毒素(mg)总回收率(%)纯度(%)分子截留后的浓缩液40022.188400.4276.25DEAE纤维素Ⅱ峰10420.72152.84.6180.386646SephadexG-75峰524.18217.369.64138.577696.4从表1可见,通过DEAE-纤维素柱层析后,SET-C回收率为66%而纯度为46%,再通过SephadexG-75分子筛过柱后回收率达76%,而纯度则达96.4%。五
6、、纯化前后SET-C的SDS-PAGE鉴定对分子截留浓缩的截留原液,经DEAE-纤维素初步提以的浓缩液及再经SephadexG-75分子筛纯化后浓缩液,在同一块10%的SDS-PAGE凝胶板上,分别滴样进行电泳后染色观察,结果见图3:CBA(A:浓缩液B:经DEAE柱C:经SephadexG-75柱)图3SET-C各部样品的电泳图谱从图3可见,经DEAE-纤维素柱层析后,杂蛋白带显著减少,而再经SephadexG-75分子筛提纯后,在SDS-PAGE中呈现一条清晰的条带。六、纯化后的SET-C分子量测定对纯化后的S
7、ET-C制品与已知分子量标准蛋白质在同一块10%SDS-PAGE凝胶板进行电泳后作染色检定,结果见图4、图5(M:standardproteinS:sample)图4SDS-PAGE测定肠毒素C分子量图5SETC分子量测定结果30000从图4、图5中可见纯化SET-C在PAGE中呈现单一条带,通过与标准蛋白分子量比较计算,SET-C的分子量约在28000dalton左右。七、对SET-C纯化品的N末端氨基酸测定由我公司提供纯化SET-C,请上海基康生物技术有限公司,用PROCISE(R)cLC蛋白测序系统(App
8、liedBiosystems)检测N末端10个氨基酸,结果这10个氨基酸依次为“GluSerGlnProAspProThrProAspGlu”。谢谢五年级科学下册第一单元:沉和浮第一节物体在水中是沉还是浮1、物体在水中(),判断物体沉浮有一定的标准。2、()构成的物体,改变它的(),沉浮状况不改变。3、物体的沉浮与自身的()和()都有关。有沉有浮同种材料重量
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