流式细胞术实验方法(周期,凋亡,表面抗原等).pdf

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1、流式细胞术实验方法PI染色操作步骤1、将单细胞悬液加入2ml圆底离心管中，离心，1500rpm,5min，弃上清液。2、加入PBS1ml离心洗涤1次，弃上清。3、加入2ml预冷的70%酒精，4℃固定30min，或是-20℃固定过夜。4、离心，弃上清液。5、用1×PBS1ml洗涤1次，离心。6、加入RNaseA(工作浓度20ug/ml)于500ul1×PBS中，37℃孵育30min，离心。7、用1×PBS1ml洗涤1次，离心。8、加入PI(工作浓度50ug/ml)于500ul1×PBS中，室温避光孵育30min。9、混匀，过300目筛网，置流式管中

2、，4℃冰箱保存，待测。GFPPI染色操作步骤1、将单细胞悬液加入2ml圆底离心管中，离心，1500rpm,5min，弃上清液。2、加入PBS1ml离心洗涤1次，弃上清。3、加入2ml预冷PFA，PFA的浓度根据细胞的特点进行调节，4℃固定30min。以下步骤同PI染色操作步骤的（4-9）细胞表面直接免疫荧光染色操作步骤1、将单细胞悬液加入2ml圆底离心管中，离心，1500rpm,5min，弃上清液。2、以冷PBA1ml，离心洗涤，弃上清液。3、加入用PBA稀释的荧光素标记的抗体200ul。用微量移液器轻轻吹打混匀，4℃或置冰上孵育30min-1h

3、。4、离心弃上清液。5、加入冷PBS1ml,离心洗涤2次，以除去未结合的多余抗体成分。6、向细胞中加入冷PBS500ul,吹打混匀，置流式管中，4℃避光保存，待测。细胞表面间接免疫荧光染色操作步骤1-2、同细胞表面直接免疫荧光染色操作步骤3、用PBA稀释的第一抗体200ul，对照管加入对应于一抗的正常实验动物IgG，轻轻吹打混匀，4℃或置冰上孵育1、5-2h。离心，弃上清。4、PBS1ml离心洗涤1次，以去除多余的未结合的特异性抗体。5、PBA适当稀释的荧光素标记的第二抗体200ul。吹打混匀，4℃或置冰上孵育30min，避光。6、PBS1ml离

4、心洗涤2次。7、将细胞重新悬浮于500ulPBS中，混匀，置流式管中，避光，4℃冰箱保存，待测。胞内直接免疫荧光染色操作步骤1、将单细胞悬液加入2ml圆底离心管中，离心，1500rpm,5min，弃上清液。2、用1×PBS1ml洗涤1次，离心。3、4%PFA1ml，4℃固定30min。4、用1×PBS1ml洗涤1次，离心。5、0.1%Triton-1001ml,室温10min。6、用1×PBS1ml洗涤1次，离心。7、加入用PBA稀释的荧光素标记的抗体200ul，用微量移液器轻轻吹打混匀，4℃或置冰上孵育30min-1h。8、离心弃上清液。9、加

5、入冷PBS1ml,离心洗涤2次，以除去未结合的多余抗体成分。10、向细胞中加入冷PBS500ul,吹打混匀，置流式管中，4℃避光保存，待测。胞内间接免疫荧光染色操作步骤1-6、同胞内直接免疫荧光染色操作步骤7、加入用PBA稀释的第一抗体200ul，对照管加入对应于一抗的正常实验动物IgG，轻轻吹打混匀，4℃或置冰上孵育1.5-2h。离心，弃上清。8、冷PBS1ml离心洗涤1次，以去除多余的未结合的特异性抗体。9、加入PBA适当稀释的荧光素标记的第二抗体200ul。吹打混匀，4℃或置冰上孵育30min，避光。10、冷PBA1ml离心洗涤2次。11、

6、将细胞重新悬浮于500ulPBS中，混匀，置流式管中，避光，4℃冰箱保存，待测。备注：1、RNaseA：贮液浓度：1mg/ml；工作液配制：加1mg/ml贮液10ul于500ul1×PBS中，使终浓度为20ug/ml。2、PI：贮液浓度：2.5mg/ml；工作液配制：加2、5mg/ml贮液10ul于500ul1×PBS中，使终浓度为50ug/ml。3、PBA：即PBS加1-2%牛血清白蛋白，加0.1%叠氮钠。64、检测样品细胞浓度1x10/ml。