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时间:2019-05-10
《RNAi介导的Lcy基因沉默对番茄果实中番茄红素含量的影响》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在学术论文-天天文库。
1、西南大学博士学位论文RNAi介导的Lcy基因沉默对番茄果实中番茄红素含量的影响姓名:万群申请学位级别:博士专业:园艺学指导教师:张兴国;宋明20070401西南大学博十学位论文根据GenBank中公布的番茄Pds启动子序列(U46919)设计特异引物,从番茄基因组中分离了长1790bp的,ads启动子序列.测序结果表明所分离的Pds启动子序列和GenBank中公布的一致。通过SalI和毖棚I酶切将全长Pds启动子插入到pVCT一2020表达载体中,替换掉该载体中GUS基因的35S启动子,构建成携有Pds-GUS基因表达盒的植物基因表达载体。通过农杆菌介导的
2、转基因方法将Pds-GUS基因转入番茄中,获得的转基因番茄的果实j叶片及根经X-Gluc染色5h,70%乙醇脱色后,显微镜下观察照相。结果表明Pds启动子具有果实特异性的特点.2.番茄红素环化酶(Lcy)基因的DNA片段的克隆,根据GenBank中公布的番茄红素13环化酶基因(Lcy-P)序列0【86452)设计特异引物,上游引物P166:cTATGGTGTTTGGGTGGATG,下游引物P167:GTGcTcGATGc从cTC嚣CTrCTCTA,通过PcR从番茄基因组中获得了长302bp的Lcy片段,测序结果表明与GenBank公布的一致。3.果实特异性
3、RNAi的植物表达载体的构建通过Sa]I酶切,补平,再用Bali酶切后连接,得到Lcy片段反向重复连接的中间克隆载体p∞一srLcy。将pMD-srLcy经胁lI酶切,去磷酸化后与内含子连接,构建RNAi片段的中间克隆载体pMD-RNAi。pMD-RNAi经妇,I和ECll36II切下RNAi片段插入到pVCT2020载体中,构建成pvCT—RNAi表达载体。pMn—Pds经SalI和&胡I切下Pds启动子后,将Pds片段插入到SalI和EcogI酶切的pVCT—RNAi载体中,构建成pVCT-PdsRNAi载体。构建成的pVCT—PdsRNAi表达载体经
4、酶切鉴定,能获得正确的目的带,表明构建的载体正确。4.番茄遗传转化再生体系的建立番茄种子经肥皂水清洗2~3次,70%的乙醇消毒30s后,清水冲洗掉乙醇;然后在超净台上用10%的次氯酸钠消毒30min,灭菌水漂洗4次后。接种于l/2惦培养基上,暗培养2~3天,待番茄种子发芽后,于25℃,光照强度18001x,16h光/8h暗的光周期条件下培养直到子叶完全展开。切取番茄的子叶和下胚轴,分别接种到惦+1.0mg/L6-BA+0.2mg/LIAA+3%蔗糖+6.5%琼脂的固体培养基上,比较子叶和下胚轴的芽分化能力,结果表明子叶的芽分化能力高于下胚轴。将番茄子叶接种
5、到IIs附加不同浓度6一队(1~3mg/L)与IAA(O.1~O.3mg/L)及6一BA(1~3mg/L)与NAA(0.1~O.3mg/L)组合的培养基上,筛选适宜芽分化的激素浓度及最佳组合。结果表明在MS+1.0mg/L6-BA+0.2mg/LI从+3%蔗糖+6.5%琼脂的培养基上番茄子叶的芽诱导率最高,并且诱导芽所需要的时间最短,长出的芽最壮,因此本实验最终采用MS+1.0mWL6-BA+0.2mg/LIAA+3%蔗糖+6.5%琼脂组合的培养基来诱导番茄子叶发芽。设计不同浓度的IAA(0.2~0.5mg/L)。观察不定芽生根的速度、数量及生根的质量,以
6、确定适丁二番茄生根的最佳IAA浓度,结果显示幼苗在不同培养基中都能生根,其中以含0.4mg/LIAA的培养基生根最快,一周后即出现大鼍不定根,根系比较壮。II摘要为了测定外植体对Kan的敏感性,在筛选的最佳诱导培养基中,加入不同浓度的kan(O、10、20、30,40,50、60、70mg/L)测定外植体的分化情况,每个浓度3次重复,每次重复20个外植体,接种观察不同浓度kan对番茄子叶分化抑制的效果。结果表明当在浓度为60mg/L的培养基上,有少量愈伤组织形成,以后逐渐白化、死去,不能分化出芽;含40mg/Lkan.的培养基上多数外植体形成较多的愈伤组织
7、,大部分可分化出绿芽,并且生长正常;因此本实验所用番茄材料适宜的筛选压为kan50mg/L.5.转基因番茄的获得采用农杆菌介导法,将携带pVCT-PdsRNAi表达载体的新鲜的农杆菌菌液用液体Ms培养基重悬后,浸染已经在分化培养基上预培养两天的番茄子叶,将经农杆菌浸染的外植体接种到芽诱导培养基(MS+1.0mg/L6-BA+0.2mg/LI从+309/L蔗糖+琼脂6.59/L)上28"C暗培养2d,然后将外植体转入抑菌培养基(MS+1.0mg/L6-队+0.2mg/kIAA+30g/L蔗糖+300mg/L羧卞青霉素cb,pH5.8)上培养7天,然后把抑菌培
8、养7d后的外植体转移到选择培养基(MS+1.omg/L6一卧+0.
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