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时间:2018-12-04
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1、大鼠少突胶质细胞的纯化培养与鉴定【摘要】目的探讨新生2dSpragueDaratcerebraltissue.MethodsBasedonthedifferentpropertiesofdevelopmentaltimecourses,cellularadhesionsandgroediumandidentifiedbyimmmunofluorescentstaining.ResultsTheripeoligodendrocytesethoda),PDGFAA、bFGF(Peprotech),胰岛素、甲状腺素均为医用试剂。DMEM/
2、F12(1∶1)条件培养基A配方为DMEM/F12(1∶1)、10ng/mLPDGF、10ng/mLbFGF、0.5%FCS。DMEM/F12(1∶1)条件培养基B配方[5]为DMEM/F12(1∶1)、亚硒酸钠0.8μg/mL、腐胺16.1mg/L、转铁蛋白50mg/L、胰岛素5mg/L、甲状腺素0.4μg/L、碳酸氢钠2.2g/L。②免疫荧光的主要试剂。小鼠抗大鼠A2B5单克隆抗体(R&D)、兔抗大鼠Gal多克隆抗体(Chemicon)、山羊抗小鼠IgM抗体TRITC(SouthernBiotech)、山羊抗兔IgGFITC(中杉
3、公司)。1.2方法1.2.1大鼠皮层胶质细胞混合培养取出生48h之内的SD大鼠,无菌条件下取大脑,置入PBS液中,在解剖显微镜下剔除脑膜及血管,分离出大脑皮层。剪碎后,反复机械轻轻吹打,100目滤器过滤,1500r/min离心5min,弃上清。加入培养基高糖DMEM,含15%FCS,使细胞充分分离,然后以1×106的密度接种于预先涂有多聚赖氨酸的培养瓶中,置于37℃、5%CO2培养箱中,3d换液一次。1.2.2O2A纯化及少突胶质细胞诱导分化培养细胞生长7~8d后可分为两层,用封口膜封闭培养瓶口,置于37℃恒温摇床中,150r/min振荡
4、2h后,吸掉上层培养液,去除小胶质细胞,加入培养基高糖DMEM,含15%FCS,再以250r/min振荡17~19h,收集脱落细胞于离心管内,1500r/min离心10min,弃上清,加入培养基高糖DMEM,含15%FCS重悬细胞,以3×104/L的密度接种于24孔培养板。置于37℃、5%CO2培养箱中培养6h后吸弃原培养基,改用DMEM/F12条件培养基A继续培养,即可得到纯化的O2A细胞。培养3d后改用DMEM/F12条件培养基B诱导分化,可得到成熟的少突胶质细胞。1.3细胞生物学特性分析1.3.1细胞形态观察倒置荧光相差显微镜(Ni
5、kon,TE2000s)观察培养细胞的生长过程和形态学变化。1.3.2细胞免疫荧光鉴定收集含有细胞的玻片,0.01mol/LPBS(pH7.4)洗涤细胞,4%多聚甲醛固定20min,按常规方法进行细胞免疫荧光染色。一抗分别为小鼠抗大鼠A2B5单克隆抗体(5μg/mL)、兔抗大鼠Gal多克隆抗体(1∶50),二抗分别为山羊抗小鼠IgM抗体TRITC(1μg/106cells)、山羊抗兔IgGFITC(1∶200)。空白对照均用PBS代替一抗。2结果2.1细胞形态观察2.1.1混合胶质细胞培养①混合胶质细胞培养第3天,倒置荧光相差显微镜
6、下观察,多数的细胞体积较大,胞体扁平,具有较粗的突起,呈片状,胞核较大,圆形。在位于扁平细胞表面可见一些体积较小,胞体较透亮呈圆形或椭圆形的细胞,具有单极或双极的细小突起。②培养第7~8天,倒置显微镜下观察,胞体扁平,突起粗大的细胞已长满瓶底。在表面有成堆或呈葡萄串样生长的胞体较小、折光性强的细胞(图1)。图1混合胶质细胞培养第7天(×200)2.1.2纯化O2A形态观察24h后细胞成堆聚集形成克隆球,边缘迁移出细胞(图2),克隆球A2B5标记阳性(图3)。第2~3天细胞增殖旺盛。细胞体积较小,胞体较透亮,呈圆形或椭圆形,多数细胞具有双极
7、突起,其突起较细直无分支(图4),A2B5标记阳性(图5)。2.1.3诱导分化后细胞形态观察多数细胞的体积无明显变化,部分细胞胞体增大,细胞突起明显增多,在粗短的初级胞突上出现茂密的次级胞突,且相互交联成蜘蛛网状(图6),细胞GC标记阳性(图7)。2.2免疫荧光鉴定O2A祖细胞A2B5荧光标记呈阳性,红色阳性反应物位于胞体和突起。少突胶质细胞Gal荧光标记呈阳性,绿色阳性反应物位于胞体和突起。空白对照组结果为阴性。3讨论本实验结果观察到混合胶质细胞原代培养7d后,贴壁的星形胶质细胞相互融合形成一层细胞毡,O2A祖细胞则散布其上,因细胞生长
8、缓慢而无法融合。这些表现是因星形胶质细胞和少突胶质细胞的生长特性不同决定的,也为振荡分离O2A祖细胞提供了可能。振荡频率是影响细胞分离的重要因素,国内报道多为80~120r/min,8~12h
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