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时间:2018-11-20
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1、组蛋白去乙酰化酶抑制剂对前列腺癌PC3细胞的增殖抑制和凋亡诱导作用论文【摘要】目的研究组蛋白去乙酰化酶抑制剂对前列腺癌PC3细胞株的增殖抑制和诱导凋亡作用。方法前列腺癌PC3细胞经不同剂量组蛋白去乙酰化酶抑制剂作用后,MTT法测定组蛋白去乙酰化酶抑制剂对PC3细胞的增殖抑制率,流式细胞仪检测细胞周期及凋亡峰,荧光分光光度计测定caspase3的活性。结果组蛋白去乙酰化酶抑制剂对PC3细胞有显著的增殖抑制作用,呈时间剂量依赖性;细胞周期被阻滞于G1/G0期,S期细胞减少;组蛋白去乙酰化酶抑制剂作用后加药组caspase3表达增
2、加,与对照组比较有显著差异(P0.01)。结论组蛋白去乙酰化酶抑制剂对PC3细胞具有抑制增殖和诱导凋亡作用。【关键词】组蛋白去乙酰化酶抑制剂;前列腺癌细胞株PC3;细胞凋亡组蛋白乙酰化/去乙酰化修饰是基因转录调控的关键机制之一,与癌症的发生密切相关。近年研究表明.freela公司,用二甲基亚砜(DMSO)稀释成工作液,等量分装,置于-20℃保存,用前解冻。胎牛血清、RPMI1640、四甲基偶氮唑蓝(MTT)、DMSO、胰蛋白酶均购于为北京华美公司;碘化丙啶(PI)、caspase3检测试剂盒购于碧云天生物技术研究所。1.2细胞系及细
3、胞培养前列腺癌PC3细胞购于中国科学院上海细胞生物学研究所,置于37℃、饱和湿度的5%CO2培养箱中开放培养,培养用RPMI1640培养液(含10%小牛血清,青霉素100U/ml,链霉素100mg/L)。细胞呈单层贴壁生长,达80%左右融合时用0.25%的胰蛋白酶消化传代,每2~3d传代1次,取对数生长期细胞进行实验。1.3细胞增殖抑制实验(MTT法)取对数生长期的PC3细胞按1×104/L接种于96孔细胞培养板中,每孔200μl,实验组分别加人不同浓度的TSA20μl(终浓度分别为10、50、250、1250nmol/L),对照组加
4、入与TSA等量的培养液20μl,每组设3个平行孔。置于37℃、5%CO2培养箱内培养,分别于第1、2天进行处理,每孔加人20μlMTT液(5g/L,以PBS缓冲液配制),继续培养4h后,弃上清,每孔再加入DMSO150μl,震荡10min,用酶标仪于492nm波长下测定每孔的吸光度(A)值。计算公式:抑制率(%)=(1-A对照/A实验)×100%。1.4流式细胞仪检测凋亡及细胞周期分析取对数生长期的PC3细胞按1×106/L接种于6孔细胞培养板中,实验组加入终浓度为750nmol/L的TSA,对照组加入与TSA等量的培养液,作用24h后
5、,无菌收集细胞〔数目约(1~5)×106个/ml〕1200r/min离心5min,弃去培养液,加人PBS洗涤细胞2次,然后用预冷的无水乙醇(乙醇终浓度为70%)固定,4℃过夜后再用PBS洗2次以去掉固定液,加入PI综合染液1ml(50μg/mlPI,20μg/mlRNase,0.1%TritonX100),至4℃避光30min后上机检测,每组重复3次。1.5Caspase3活性检测取对数生长期的PC3细胞,实验组加入终浓度为750nmol/L的TSA,对照组加人与TSA等量的培养液,作用24h后,胰酶消化贴壁细胞,并收集至备用的细胞
6、培养液中。600r/min4℃离心5min收集细胞,小心吸除上清,同时确保尽量没有细胞被吸除,PBS洗涤1次。同前吸尽上清后,按照每2×106细胞加入100μl裂解液的比例加入裂解液,重悬沉淀,冰浴裂解15min,立即测定caspase3的酶活性。1.6统计学处理使用SPSS10.0统狡软件。计数资料和率的比较采用χ2检验。2结果2.1不同浓度TSA对PC3细胞的抑制作用10、50、250、1250nmol/LTSA处理PC3细胞24h后,随浓度增加,吸光度逐渐降低,当浓度250nmol/L时,与对照组比较有显著差异(P0.001)
7、(见表1)。细胞存活率分别为80%、75%、62%、49%,与上述结果一致。表1曲古抑菌素对PC3细胞的抑制作用与对照组比较:1)P0.0012.2流式细胞术检测细胞凋亡情况在细胞DNA直方图上,G1峰前出现亚二倍体峰。对照组细胞凋亡率5.34%;实验组凋亡率15.19%,组间比较有显著性差异(P0.01)。2.3TSA通过激活caspase3诱导细胞凋亡与对照组相比较,实验组caspase3水平明显增加,并呈时间依赖性。见表2。表2caspase3检测结果与对照组比较:1)P0.0013讨论乙酰化是一种可逆的蛋白质共价修饰形式,
8、由组蛋白乙酰转移酶(HAT)和HDAC共同调控。组蛋白的低乙酰化和高甲基化是肿瘤细胞的主要特征之一,因此肿瘤细胞内过度表达的HDAC成为化疗药物研制和作用的靶蛋白。HDACi是一类从生物体内提
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