利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响

利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响

ID:25429516

大小:65.50 KB

页数:10页

时间:2018-11-20

利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响_第1页
利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响_第2页
利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响_第3页
利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响_第4页
利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响_第5页
资源描述:

《利用rnai沉默kiaa0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在工程资料-天天文库

1、利用RNAi沉默KIAA0280后对缺氧诱导大鼠神经元凋亡的影响作者:黄海潮,潘雪刁,金桂芳,巫玮,潘琴,石磊,臧林泉【摘要】目的利用RNA干扰(RNAi)技术,观察脑缺血相关新蛋白KIAA0280被特异性沉默后对正常神经元和缺氧诱导神经元凋亡的影响。方法取新生大鼠培养至5~7d的神经元,经由密闭容器引起缺氧诱导神经元凋亡模型。采用RNAi技术封闭KIAA0280的表达,观察该基因被封闭后对正常神经元的生长以及缺氧诱导神经元凋亡的作用和影响。结果脂质体转染KIAA0280基因特异性siRNA12、24h后对正常细胞生长具有一定的影响;在此基础上缺氧4、8h,发现

2、RNAi组的神经元对缺氧诱导的神经元凋亡比对照组对缺氧更加敏感,更易受损伤。结论KIAA0280对正常神经元具有一定的作用,并且对缺氧诱导凋亡神经元具有一定的保护作用。【关键词】KIAA0280;RNAi;缺氧;神经元;凋亡    Abstract:ObjectiveToobservetheeffectonnormalneuronandapoptosisneuronsinducedbyhypoxiaafterblockingtheKIAA0280byRNAitechnique.MethodsPrimaryneuronsofratsculturedfor5~7do

3、delofneuronalapoptosis.AfterblockingtheKIAA0280byRNAitechnique,theeffectsonthenormalneuronandneuronalapoptosisinducedbyhypoxiaefor12h,24h,theimpactsonthenormalneuronsbythesiRNAentfor4hand8h;itisfoundthat,paredplehypoxicgroup,theRNAigrouporesensitiveandliabletobeinjuredduringapoptosis

4、inducedbyhypoxia.ConclusionApplicationoftheRNAitosilenceKIAA0280hadcertainimpactsonthenormalneuronsandcouldpromoteapoptosisanddeathinthehypoxic-inducedneuronapoptosis.Italneurons,andplayedaroleinprotectinghypoxia-inducedapoptosisneurons.  KeyRNA荧光差异显示技术(mRNAfluorescencedifferentialdi

5、splay)研究缺血时神经元在此应激条件下基因差异的表达,从中筛选出差异表达明显的基因(上调/下调基因),以明确防治脑缺血、缺氧相关疾病(心肌、器官移植、肿瘤等)的一个或者多个新靶点。前期工作利用MCAO造成大鼠缺血缺氧动物模型,免疫组织化学和EM高糖培养基、胰蛋白酶、优级胎牛血清(FBS)、马血清(HS)、B27、HEPEs购自美国Gibco公司。LipofectamineTM2000购自Invitrogen公司。EDTA由Augus公司提供。Hoechst33258、SRB由Sigma公司提供。LDH检测试剂盒由南京建成生物工程研究所提供。siRNA由上海吉

6、玛制药技术有限公司提供。其他试剂均为国产分析纯以上产品。  1.3仪器  单人双面无菌操作台(苏州净化),细胞培养箱、低温高速离心机(美国Thermo),荧光显微镜(带数码相机)、倒置显微镜(德国LEica),酶标仪(美国BioRad)等。  2方法  2.1原代大鼠神经元的分离与培养[4]    预先用多聚赖氨酸包被培养皿6h以上,吸出多聚赖氨酸,风干2h,备用。取SD大鼠乳鼠(出生1~3d),体积分数为75%的酒精消毒,断头开颅,去脑膜,取大脑皮层神经元,放进Kreb’s解剖液(保持低温),剪碎至大约0.5mm2,成沙泥状,用Kreb’s解剖液冲洗2~3次

7、,0.25%的胰酶消化10min,重复消化2~3次,将每次的消化液放入带血清的DMEM中终止消化,将细胞悬液适量吹打70~100次以分散细胞,过筛(180目),1500r/min离心5~8min,去上清,再加入DMEM培养液重悬细胞,细胞计数并调整细胞数使其到2.0~2.5×105个/mL,将其接种到预先涂以多聚赖氨酸的培养皿中。在37℃、5%CO2条件下培养,培养1d,细胞贴壁后,换液去除死细胞。在48h后,加入胶质细胞抑制阿糖胞苷,每3天换液1次,培养1个星期,可做实验。  2.2体外细胞缺氧模型的制备[5]    用培养了1个星期的细胞置密闭容器中,真空泵

8、抽空,继续保持抽取30m

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文

此文档下载收益归作者所有

当前文档最多预览五页,下载文档查看全文
温馨提示:
1. 部分包含数学公式或PPT动画的文件,查看预览时可能会显示错乱或异常,文件下载后无此问题,请放心下载。
2. 本文档由用户上传,版权归属用户,天天文库负责整理代发布。如果您对本文档版权有争议请及时联系客服。
3. 下载前请仔细阅读文档内容,确认文档内容符合您的需求后进行下载,若出现内容与标题不符可向本站投诉处理。
4. 下载文档时可能由于网络波动等原因无法下载或下载错误,付费完成后未能成功下载的用户请联系客服处理。