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时间:2018-11-20
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1、polβ高表达与食管癌细胞耐药的相关性【关键词】DNA聚合酶β;转染;食管肿瘤;肿瘤细胞,培养的;抗药性,肿瘤;四甲基偶氮唑蓝 DNA聚合酶beta(polymerasebetagene,polβ)广泛存在于哺乳动物细胞核内,是一条Mr为39×103的单肽链小分子蛋白,由355个氨基酸组成,是目前已知的最小的DNA聚合酶.在碱基切除修复,DNA复制,跨损伤合成中发挥重要作用,还与基因组不稳定性有关[1-4].近年来的研究表明在多种肿瘤组织及肿瘤细胞株内polβmRNA的表达都明显增加[5-6].polβ与肿瘤细胞耐药性的关系也逐渐引起人们的注意.本实验通过研究人食
2、管癌顺铂(concentrationofcisplatin,cDDP)耐药细胞系Ec9706/cDDP和稳定高表达人野生型polβ的Ec9706细胞中polβ的表达水平及其对抗肿瘤药cDDP的敏感性,旨在进一步探讨polβ高表达与食管癌细胞耐药的相关性. 1材料和方法 1.1材料 人食管癌细胞株Ec9706由中国医学科学院肿瘤研究所提供;cDDP山东齐鲁药业股份有限公司产品;RPMI1640培养液Gibco/BRL公司生产;四甲基偶氮唑蓝(MTT)为美国Sigma产品;pEGFPC3(Cloech公司);野生型人polβ重组绿色荧光蛋白表达载体pEGFPA
3、C3(微生物学与免疫学教研室赵国强教授惠赠);G418(宝生物公司);6TG(美国Sigma公司);LipofectamineTM2000(Invitrogen公司);引物2对,由上海生工公司合成:polβRNA检测引物:上游5′TGTTTGCCAGCTTCCCAGTA3′,下游5′CTCCAGTGACTCCCAAGGGA3′,扩增长度206bp;βactin引物:上游5′TCAAGATCATTGCTCCTCCTGA3′,下游5′CTCGTCATACTCCTGCTTGCTG3′,扩增长度113bp. 1.2方法 1.2.1cDDP诱导耐药细胞系Ec9706/
4、cDDP的建立 采用cDDP中等浓度、间歇作用方法建株.以终浓度为2mg/L的cDDP培养基冲击对数生长期的Ec9706细胞,48h后弃去含药培养基,PBS洗3次,换新鲜培养基.1~2d换液1次,洗去死亡细胞,待形成细胞克隆时传代,恢复稳定生长后提高cDDP浓度再次冲击,如此反复作用直至细胞可在浓度为0.5mg/L的cDDP培养液中维持培养. 1.2.2稳定高表达人野生型polβ的Ec9706细胞系的建立 取对数生长期Ec9706细胞以2.5×105个/孔接种于6孔板,待细胞融和度达60%~70%时,以正常Ec9706细胞作对照,分组转染pEGFPC3(空质
5、粒)和pEGFPAC3,按转染试剂LipofectamineTM2000操作说明书进行.4~6h后,弃转染液换2mL含10mL/L胎牛血清的培养液继续培养.48h后以含750mg/LG418的培养液筛选,约14d后对照Ec9706细胞全部死亡,转染组改用含200mg/LG418的培养液,阳性克隆扩大培养后,建立稳定传代转染细胞系.转染pEGFPC3,pEGFPAC3的细胞分别用Ec9706C3,Ec9706AC3表示. 1.2.3细胞形态学观察普通倒置显微镜下观察各组细胞形态,荧光显微镜观察转染后细胞绿色荧光. 1.2.4RTPCR检测polβmRN
6、A的表达取细胞各1瓶,按Trizol试剂盒说明书抽提细胞总RNA,逆转录后PCR扩增.PCR反应体系30μL:10×buffer3μL,dNTP2.4μL,上下游引物各0.5μL,Taq酶0.5U,逆转录产物5μL.PCR反应条件:94℃预变性5min,94℃变性45s,55℃退火45s,72℃延伸60s,35个循环后,72℃延伸5min.15g/L琼脂糖凝胶电泳.SYNGENE凝胶分析系统软件分析电泳结果,用polβ与βactin积分吸光度值的比值表示polβ基因的相对表达水平. 1.2.5MTT法测细胞对cDDP敏感性的变化常规MTT法检测,酶标仪以波长55
7、0nm测各孔A值,计算相对抑制率(%)=(1-加药孔A值/对照孔A值)×100%,用IC50计算器软件计算50%细胞生长抑制所需的药物浓度(IC50),耐药指数(RI)=待测细胞IC50/Ec9706细胞IC50. 统计学处理:用SPSS10.0统计软件处理数据,数据以x±s表示,t检验,α=0.05. 2结果 2.1各组细胞形态 经过9mo的体外诱导筛选获得了在含0.5mg/L的cDDP培养液中生长良好的耐药细胞系Ec9706/cDDP.诱导过程中在加入cDDP后24h倒置显微镜下可见大部分细胞因死亡而漂浮起来,培养液略浑浊,残留贴壁细胞发生明显改变,
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