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1、Hsp70,Toll样受体4抗体与自身免疫性内耳病的关系论文【摘要】目的:建立一种自身免疫性内耳病的动物模型,寻求Toll样受体4抗体与Hsp70的关系.方法:提取豚鼠内耳膜迷路组织为抗原.将豚鼠用环磷酰胺预处理,将抗原与等量弗氏完全佐剂一起免疫豚鼠,观测Hsp70在内耳的表达;通过鼓室注射Toll样受体4抗体,再观测Hsp70在内耳的表达.结果:免疫豚鼠后听性脑干反应阈显著提高,内耳出现显著的炎细胞浸润,Hsp70的表达增强,TNFα,NFκB的表达增多.freelmuneinnereardisease,A
2、IED)的动物模型,在鼓室注射Toll样受体4阻断剂即Toll样受体4抗体前后,观察模型动物耳蜗组织中的Hsp70表达情况.1材料和方法1.1材料耳廓反射正常、无中耳感染、体质量250~400g的健康、白色、短毛、红目豚鼠75只,雌雄不拘(重庆医科大学动物实验中心).其中25只用于提制内耳抗原,其余50只随机分为实验组[20只,给予环磷酰胺(CTX)和粗制内耳抗原接种处理];处理组(10只,给予CTX和粗制内耳抗原接种处理后施加干预因素Toll样受体4抗体);对照1组(10只,只给予CTX预处理);对照2组(10
3、只,不施加任何因素),分笼后适应性喂养1anTLR4(HTA125),美国eBioscience公司];苯甲基磺酰氟(PMSF,碧云天生物技术研究所);鼠抗Hsp70mAb、弗氏完全佐剂(CFA)(美国Sigma公司),大鼠抗核因子кB(p65)mAb(SantaCruz公司),均由北京中山公司分装;TNFαELISA试剂盒(晶美公司);抑肽酶、DAB显色系列购自北京中山公司;CTX购自重庆医科大学附属一院药房.1.2方法1.2.1内耳抗原的提制豚鼠25只,用速眠新0.1mL/kg肌肉注射麻醉后断头处死,参照文
4、献[2]的方法提制粗制内耳抗原液,用酶标仪检测内耳抗原液浓度,并在-70℃分装保存备用.1.2.2免疫动物将实验组豚鼠腹腔注射CTX(150mg/kg)进行预处理,2d后对每只豚鼠用粗制内耳抗原液与弗氏完全佐剂等量乳化液400μg粗制内耳抗原蛋白量共0.2mL进行颈、背部、足部皮内多点注射接种[2].处理组按实验组的方法免疫豚鼠,2d后每只豚鼠经鼓室注射TLR4阻断剂100μg.1.2.3内耳石蜡切片的制作将动物麻醉后快速断头,取出听泡,经40mg/L多聚甲醛固定,100mg/LEDTANa2脱钙后,OCT包埋
5、标本,沿耳蜗中轴切片,片厚5μm.1.2.4检测指标1.2.4.1听性脑干反应(ABR)测试所有动物在免疫前均行ABR测试,实验组动物免疫后1s,滤波带宽100~300Hz,信号叠加1000次,以ABR波Ⅲ反应阈为标准判断听阈.1.2.4.2豚鼠耳蜗Hsp70的表达取实验组动物听阈超过10dB的10耳,并随机选取处理组和对照组的10耳,耳蜗切片做免疫组化染色(SABC法).切片用0.3mL/L甲醇H2O2液处理;山羊血清封闭;加一抗(鼠抗Hsp70mAb1∶100)37℃孵育1h,并用普通小鼠IgG(1∶100
6、)取代一抗作阴性对照;滴加二抗(生物素化羊抗小鼠IgG,即用型)在37℃反应30min;二氨基联苯胺(DAB)显色,常规脱水、透明、中性树胶封片.胞核及胞质呈棕黄色染色为阳性.在上述各组的切片中,每耳分别随机抽出1张近中轴的切片,做统计学分析.每张切片随机选取10个视野计数300个螺旋神经节细胞,依照阳性细胞百分比判断,阳性率10%(-)、阳性率10%~25%(+)、阳性率26%~50%()、阳性率50%().1.2.4.3耳蜗中NFκB(p65)的表达用SABC法,方法及结果判定同上,以缓冲液代替一抗作阴
7、性对照.1.2.4.4内耳TNFα的表达用ELISA夹心法,应用豚鼠TNFαELISA试剂盒,严格按照产品说明进行操作,.freelmalianheatshockproteinfamilies[J].ExpFunctionsExperientia,1992,48(7):629-634.[4]GopsonAM.LocalizationofinducibleheatshockproteinmRNAintheguineapigcochleaajormammalianstressproteinintheratcoch
8、leafolloia[J].Laryngoscope,1992,102(9):981-987.[6]GelmanAE,TurkaLA.Autoimmunityheatsup[J].NatMed,2003,9(12):1465-1466.[7]AkiraS,TakedaK,KaishoT.Tolllikereceptors:Criticalproteinslinkingi