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时间:2018-11-12
《幽门螺杆菌毒素相关基因的克隆、测序及表达》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在学术论文-天天文库。
1、幽门螺杆菌毒素相关基因的克隆、测序及表达摘要:目的分段扩增、克隆幽门螺杆菌毒素相关基因cagA中间区cag1,cag2,并利用大肠杆菌系统表达.方法PCR法扩增cagA基因,双脱氧中止法测序正确后,克隆入大肠杆菌表达载体pBV220,受控于PRPL启动子,转化大肠杆菌DH5α,42℃进行温度诱导.结果PCR分段扩增出cagA中间区基因cag1,cag2,分别为975,755bp,克隆入pUC19质粒,测序正确;在pBV中构建cag1,cag2的重组表达载体pBVcagA1,pBVcagA2,工程菌诱导后SDS-PAGE显示
2、新生表达蛋白带,Mr:Cag136×103,Cag227.9×103,均与预期的cagA蛋白Mr一致,约占菌体总蛋白的36%和24%.结论成功克隆分段扩增的cagA中间区基因,并可在大肠杆菌DH5α中高效表达. Keyper-atureinduce Abstract:AIMToamplifyandclonethemiddleregionofHelicobacterpyloricagAgene,andexpresstheproteinsinE.coli.METHODSAfterthecag1andcag2plifiedb
3、yPCRandsequencdbydideoxymethods,theyoters.TherebinantplasmidspBVcag1andpBVcag2edintoE.coliDH5αandinducedat42℃respectivelytoexpresstheencodedpro┐teins.RESULTSThemiddleregionofcagAplifiedand975,755bpproductsountedto36%and24%oftotalbacterialproteinrespectively.CONCLU
4、SIONTheH.pyloricagAmiddleregionmightbesuccessfullyclonedandefficientlyexpressedfractionallyinE.coli. 0引言 毒素相关基因A(cytotoxin-associatedgene,cagA)基因是cag致病岛的一部分,其OFR约3542bp左右,3’端存在变异,相应蛋白Mr为(1.28~1.40)×105[1],是胃内致病微生物幽门螺杆菌(Hp)主要的毒力因子之一,参与胃、十二指肠溃疡及胃癌等的发病,并与疾病的转归有关[2-
5、4].中国Hp感染率高达80%以上,且大多为cagA+Hp的感染[5].现在一些Hp标准菌株的cagA基因已克隆[6,7],其表达产物cagA具有较强的抗原性,其滴度可反应Hp株间的毒力差异,而且和疾病发展也有一定的相关性[1].对Hp感染的检测可通过对抗cagA抗体的检测进行.将cagA分段表达,同时用来检测患者血清,可以更全面、准确、清晰地了解患者Hp的感染情况.我们利用原核表达系统分段克隆表达cagA基因中间区,为Hp感染的检测及治疗提供基础. 1材料和方法 1.1材料大肠杆菌JM109,DH5α,pUC19及p
6、BV220质粒为本所保存;pMC3为含cagA基因5’端大部分的pBluescript质粒,由美国Vanderlilt大学Tummuru博士惠赠.限制性内切酶、连接酶、核酸修饰酶及Taq酶均为宝生物公司产品. 1.2方法据标准菌株cagA序列[6,7]设计PCR引物,进行分段扩增: cag1正向ACAGAATTCATGGACATGGATCCCAATTACAAGT反向GTTGTCGACTTACTCGTCATAGTTGCCTGTGTT cag2正向AGAGGATCCATGGAGGTGAAACGAGCTCAG反向TCACT
7、GCAGTGGCCTCTATTCCAGATAACC cag1正向引物加起始码(ATG)及EcoRI酶切位点,反向引物上加终止码(TAA)及SalI酶切位点;cag2正向引物加起始码(ATG)及BamHI酶切位点,反向引物上加终止码(TAA)及PstI酶切位点.以pMC3为模板,反应条件为95℃5min,94℃1min,55℃1min,72℃1min.PCR产物克隆及鉴定用EcoRI+SalI(cag1),BamHI+PstI(cag2)分别双酶切纯化的PCR产物与pUC19质粒,连接外源DNA与对应线性化pUC19质粒,
8、转化E.coliJM109,氨苄青霉素抗性及蓝白筛选,挑选白色克隆,酶切鉴定重组克隆.核苷酸序列由基康公司测序.H.pyloricag1,cag2与表达载体的重组. 目的蛋白的诱导表达:工程菌在含氨苄青霉素(100mgL-1)的LB培养液中30℃振荡过夜,次日按1%转接扩大培养,继续30℃振荡2~4h
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