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时间:2018-07-06
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1、幽门螺杆菌毒素相关基因的克隆、测序及表达论文.freelper-atureinduceAbstract:AIMToamplifyandclonethemiddleregionofHelicobacterpyloricagAgene,andexpresstheproteinsinE.coli.METHODSAfterthecag1andcag2plifiedbyPCRandsequencdbydideoxymethods,theyoters.TherebinantplasmidspBVcag1andpBVcag2edintoE.coliDH5αandinducedat42
2、℃respectivelytoexpresstheencodedpro┐teins.RESULTSThemiddleregionofcagAplifiedand975,755bpproductsountedto36%and24%oftotalbacterialproteinrespectively.CONCLUSIONTheH.pyloricagAmiddleregionmightbesuccessfullyclonedandefficientlyexpressedfractionallyinE.coli.0引言毒素相关基因A(cytotoxin-associatedg
3、ene,cagA)基因是cag致病岛的一部分,其OFR约3542bp左右,3’端存在变异,相应蛋白Mr为(1.28~1.40)×105[1],是胃内致病微生物幽门螺杆菌(Hp)主要的毒力因子之一,参与胃、十二指肠溃疡及胃癌等的发病,并与疾病的转归有关[2-4].中国Hp感染率高达80%以上,且大多为cagA+Hp的感染[5].现在一些Hp标准菌株的cagA基因已克隆[6,7],其表达产物cagA具有较强的抗原性,其滴度可反应Hp株间的毒力差异,而且和疾病发展也有一定的相关性[1].对Hp感染的检测可通过对抗cagA抗体的检测进行.将cagA分段表达,同时用来检测患者血清
4、,可以更全面、准确、清晰地了解患者Hp的感染情况.我们利用原核表达系统分段克隆表达cagA基因中间区,为Hp感染的检测及治疗提供基础.1材料和方法1.1材料大肠杆菌JM109,DH5α,pUC19及pBV220质粒为本所保存;pMC3为含cagA基因5’端大部分的pBluescript质粒,由美国Vanderlilt大学Tummuru博士惠赠.限制性内切酶、连接酶、核酸修饰酶及Taq酶均为宝生物公司产品.1.2方法据标准菌株cagA序列[6,7]设计PCR引物,进行分段扩增:cag1正向ACAGAATTCATGGACATGGATCCCAATTACAAGT反向GTTGTC
5、GACTTACTCGTCATAGTTGCCTGTGTTcag2正向AGAGGATCCATGGAGGTGAAACGAGCTCAG反向TCACTGCAGTGGCCTCTATTCCAGATAACCcag1正向引物加起始码(ATG)及EcoRI酶切位点,反向引物上加终止码(TAA)及SalI酶切位点;cag2正向引物加起始码(ATG)及BamHI酶切位点,反向引物上加终止码(TAA)及PstI酶切位点.以pMC3为模板,反应条件为95℃5min,94℃1min,55℃1min,72℃1min.PCR产物克隆及鉴定用EcoRI+SalI(cag1),BamHI+PstI(cag2
6、)分别双酶切纯化的PCR产物与pUC19质粒,连接外源DNA与对应线性化pUC19质粒,转化E.coliJM109,氨苄青霉素抗性及蓝白筛选,挑选白色克隆,酶切鉴定重组克隆.核苷酸序列由基康公司测序.H.pyloricag1,cag2与表达载体的重组.目的蛋白的诱导表达:工程菌在含氨苄青霉素(100mgL-1)的LB培养液中30℃振荡过夜,次日按1%转接扩大培养,继续30℃振荡2~4h,当A600nm=0.6时,立即转入42℃水浴摇床快速振荡5h.SDS聚丙稀酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE):4℃离心收集菌体,用含3mLL-1巯基乙醇载样液处理(100℃6~8min),
7、考马斯亮蓝R-250染色.2结果PCR扩增cag1,cag2,分别得到975和755bp的片段(Fig1).随机挑选白色克隆,经双酶切鉴定,证实含有975和755bp的插入片段(Fig2).阳性克隆送交基康公司测序,测序正确.2.1pBV┐cag1,pBV┐cag2表达质粒的构建用EcoRI+SalI(c1),BamHI+PstI(c2)分别酶切pUC19-c1,pUC-c2重组克隆和pBV220,经回收分别得到cag1,cag2基因和线性化pBV220,连接外源DNA和线性化pBV220,转化DH5α感受态细胞,氨苄青霉素抗性筛选,挑选
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