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时间:2018-11-01
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1、吡格列酮对糖尿病大鼠肺组织TNFα和NFκB【摘要】目的探讨过氧化物酶体增殖物激活受体(PPAR)γ激动剂吡格列酮对糖尿病大鼠肺部损害的保护作用及其机制。方法腹腔注射链脲佐菌素(55mg/kg)制成糖尿病动物模型。48只健康SD雄性大鼠随机分为4组:对照组、糖尿病组、高、低剂量吡格列酮治疗组。8aticglycation,NEG)和氧化应激可产生大量诸如肿瘤坏死因子(TNF)α、白介素(IL)6、IL12等促炎细胞因子和促炎症介质,导致肺组织和全身器官损害,其中核因子κB(NFκB)的过度活化是炎症反应扩大的关键环节。许多研究表明过氧化物酶体增殖物
2、激活受体γ(PPARγ)激动剂具有抗炎作用,其机制与干扰转录水平NFκB的激活而抑制单核细胞及巨噬细胞表达IL6、IL12及TNFα生成有关。因此,本课题拟通过建立DM大鼠模型,研究PPARγ激动剂吡格列酮对DM大鼠肺组织NFκB活性和TNFα水平的影响,进一步探讨DM易合并肺部感染的发病机制。 1材料与方法 1.1动物分组健康SD雄性大鼠48只(江苏大学医学院动物实验室提供),体重(180±24)g,随即分为4组,每组12只。A组:对照组;B组:DM组;C组:低剂量吡格列酮治疗组;D组:高剂量吡格列酮治疗组。 1.2实验方法 1.2.1DM
3、大鼠模型制作DM模型大鼠按55mg/kg体重的链脲佐菌素(STZ,溶解于0.1mol/LpH4.2柠檬酸缓冲液)腹腔注射。以随机血糖>16.7mmol/L,尿糖强阳性作为DM动物模型建立标准,未达到标准者均淘汰。 1.2.2对照组处理对照组仅注射相同体积的柠檬酸缓冲液。 1.2.3吡格列酮治疗组模型成功后,吡格列酮治疗组分别予10、50mg/kg吡格列酮经食道灌胃注入。 1.3检测指标 1.3.1肺组织TNFα检测将存活的4组动物于第8周以1%戊巴比妥钠(30mg/kg体重)腹腔注射麻醉;将大鼠固定于手术台上,打开胸腔,取出一小块右侧肺组织剪成小块;滤纸
4、吸干残血后,迅速称取400mg,加入1ml生理盐水;于冰浴中用超声波匀浆机匀浆,每次匀浆15s后,间歇20s待标本降温后再匀浆,反复以上操作3次;将制成的匀浆液用低温离心机在4℃,以3000r/min的速度离心15min;取上清液用ELISA方法测定TNFα水平。 1.3.2肺组织学检查取右肺组织常规作石蜡包埋切片,行HE染色,光镜观察。 1.3.3肺组织NFκB活性表达检测兔抗鼠NFκBp65抗体∶蒸馏水按1∶50稀释,常规行免疫组化染色检测肺组织NFκB表达。阳性评分标准:镜下观察5个高倍镜视野染色结果,细胞核或(和)细胞浆含棕黄色颗粒为阳性;根据
5、免疫组化着色强度评分(0分,无;1分,弱;2分,中;3分,强)和阳性细胞率评分(0分,<5%;1分,5%~10%;2分,10%~20%;3分,20%~50%;4分,>50%)之和为该病例评分值。以试剂盒内的阳性切片作为阳性对照,以PBS液分别替代一抗、二抗及SA/HRP作为每次染色阴性对照。 1.4统计学方法应用SPSS13.0统计软件,数据资料均以x±s表示,各组间比较采用单因素方差分析。 2结果 2.1肺组织TNFα检测结果DM组大鼠肺组织TNFα水平〔(4.64±0.35)ng/ml〕明显高于对照组〔(2.01±0.22)ng/ml〕(P<0.0
6、5),高、低剂量吡格列酮治疗组肺组织TNFα水平〔(2.70±0.42),(2.85±0.31)ng/ml〕均较DM组显著下降(P<0.05),但高、低剂量吡格列酮治疗组间TNFα水平差异无显著性(P>0.05)。 2.2病理组织学改变DM大鼠肺组织与正常大鼠比较,其肺泡上皮细胞及毛细血管内皮细胞基底膜明显增厚,肺泡间隔增宽,间质中胶原和弹性蛋白含量增多,部分肺泡腔萎缩甚至塌陷,部分肺泡腔内有多量炎性细胞浸润。吡格列酮治疗组病变程度减轻,见图1。 2.3各组免疫组织化学检测结果对照组大鼠气道上皮、肺泡上皮、肺泡巨噬细胞可见NFκB弱表达(0.5±0.2)
7、,DM组大鼠在肺组织上述部位NFκB表达明显增高(5.9±1.3)(P<0.05)。高、低剂量吡格列酮治疗组NFκB表达(4.5±0.9,4.3±1.1)均明显减少(P<0.05),但治疗组间比较无显著性差异(P>0.05)。见图2、图3。 图1各组肺组织病理组织学改变(HE,×100)(略) 图2DM组大鼠NFκB表达(DAB,×100)(略) 图3吡格列酮治疗组NFκB表达(DAB,×100)(略) 3讨论 DM患者感染率高达36.8%,并且仍有上升趋势,且以肺部感染最为常见。长期的高糖刺激可激活单核及肺泡巨噬细胞等释放大量的TNFα、IL
8、12、I
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