血清白蛋白的分离与纯化蛋白定量测定课件

《血清白蛋白的分离与纯化蛋白定量测定课件》由会员上传分享，免费在线阅读，更多相关内容在教育资源-天天文库。

1、血清白蛋白的分离与纯化、蛋白定量测定实验目的掌握DEAE纤维素层析法分离纯化蛋白的方法掌握考马斯亮兰法测定蛋白质的原理DEAE纤维素层析法分离纯化白蛋白离子交换层析基本原理根据待分离物质带电性质不同的分离纯化方法以离子交换剂为固定相，特定的离子溶液为流动相，依据各种离子或离子化合物与离子交换剂的结合力不同进行分离纯化的层析方式离子交换剂离子交换剂由基质、电荷基团（或称功能基团）和反离子组成。基质一般是不溶性聚合物，如纤维素，交联葡聚糖，交联琼脂糖等；树脂－O—N+(CH3)2—OH-纤维素－O—CH2—COO-—Na＋基质电荷基团反离子阳离子交

2、换剂阴离子交换剂人血清蛋白质的等电点及分子量蛋白质等电点分子量白蛋白4.8869000α1-球蛋白5.06200000α2-球蛋白5.06300000β-球蛋白5.129000-150000γ-球蛋白6.85-7.50156000-300000实验原理除去硫酸铵后的白蛋白在0.02mol/L醋酸铵缓冲液（pH6.5）条件下，加到DEAE纤维素柱上，此pH时，DEAE纤维素带正电荷。改用0.06mol/L醋酸铵缓冲液（pH6.5）后。在此pH与离子强度时，DEAE-纤维素带有正电荷，能吸附带负电荷的蛋白质如白蛋白（pI4.9）。带正电荷蛋白质如γ

3、-球蛋白（pI约7.3），不被吸附故直接流出。用0.06mol/L醋酸铵缓冲液洗脱吸附在离子交换柱上的少量β-球蛋白及α-球蛋白。将醋酸铵浓度提高至0.3mol/L，白蛋白被洗脱下来（尚混有少量α-球蛋白）。整个层析过程用紫外检测仪监测流出蛋白组分，用自动部分收集器收集，用记录仪记录整个洗脱过程。实验步骤装柱：取一根1cm×2cm的层析柱垂直夹在铁架上，注入1cm高的0.02mol/LpH6.5NH4Ac缓冲液。将已处理浸泡在0.02mol/LpH6.5NH4Ac缓冲液中的DEAE纤维素搅成悬浮状(沉淀的纤维素与NH4Ac溶液体积比为1:2)，

4、加入层析柱内，慢慢打开底部出口，同时不断加入DEAE纤维素直至柱高10cm。平衡：纤维素柱床上留有3cm高的溶液，将层析柱两头旋紧，接上恒流泵，用0.02mol/LpH6.5NH4Ac缓冲液平衡20min(流速为1ml/min,层析柱两头要旋紧，防止柱床流干)洗脱：平衡完成后，旋下上塞，慢慢打开底口使纤维素床上的液面下降到与床面相齐，夹住底口。将样品Ⅳ加到纤维素柱上，打开底口使样品Ⅳ进入到床体，直到与床面相齐，吸1.0ml0.02mol/LpH6.5NH4Ac溶液，沿柱壁慢慢加入纤维素床面上(三次，操作同上)，洗净沾在柱壁上的蛋白液。在纤维素床

5、面上加3cm高的0.02mol/LpH6.5NH4Ac溶液，将层析柱两头柱塞旋紧，接上恒流泵，用0.06~0.5mol/LpH6.5NH4Ac溶液进行梯度洗脱(流速为1ml/min)。Ⅰ室加入0.06mol/LpH6.5NH4Ac溶液200ml，Ⅱ室加入0.5mol/LpH6.5NH4Ac溶液200ml。考马斯亮兰法测定蛋白质实验原理：考马斯亮蓝法测定蛋白质浓度，是利用蛋白质与染料结合的原理定量测定微量蛋白浓度的方法。这种蛋白质测定法快速、灵敏、优点突出，因而得到广泛的应用。考马斯亮蓝法是目前灵敏度最高的蛋白质定量方法。考马斯亮兰G-250染料

6、，在酸性溶液中与蛋白质结合，使染料的最大吸收峰（max）位置由465nm变为595nm，溶液颜色也由棕黑色变为兰色。研究发现，染料主要是与蛋白质中的碱性氨基酸（特别是精氨酸）和芳香族氨基酸残基结合。在595nm下测定的吸光值A595，与蛋白质浓度成正比。实验步骤1、标准方法(1)具体测定按下表操作(待测样品的加样量见下表的第8、9、10管)加入物(ml)12*23*24*25*26*27*28*29*210*2标准蛋白00.010.020.040.060.080.10---待测蛋白-------0.020.040.06蒸馏水0.10.090.0

7、80.060.040.0200.080.060.04考马斯亮蓝试剂5.05.05.05.05.05.05.05.05.05.0边加边混匀，2-3分钟后，以1号管为空白对照，测定各样品在595nm处的光吸收值A595注意事项：最好在试剂加入后的5-20min内测定吸光值，因为这段时间内颜色最稳定测定中，蛋白-染料复合物会有少部分吸附在比色杯壁中，不可使用石英比色皿(因不易洗去染色)，可用塑料或用玻璃比色皿，使用后用95%的乙醇荡洗，以洗去染色。