基因克隆(包括dna提取技术步骤)

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1、基因克隆DNA克隆是指在体外将目的基因或DNA片段同能够自我复制的载体DNA连接，然后将其转入宿主细胞或受体生物进行表达或进一步研究的分子操作的过程，又称为重组DNA技术。DNA克隆涉及一系列的分子生物学技术，如目的DNA片段的获得、载体的选择、各种工具酶的选用、体外重组、导入宿主细胞技术和重组子筛选技术等。一 DNA的提取二目的DNA片段的获得 （酶切）三体外重组1LB培养基的配制2大肠杆菌感受态细胞的制备3载体的选择四 导入受体细胞五 重组子的筛选1插入失活法实验一DNA提取取0.5克以下的鱼类组织或20ul血液：1准备1.5ml离心管，加入500ul裂解液，取组织

2、放入离心管，破碎。（常温操作）2恒温箱裂解，55℃。30min。3加等体积Tris饱和酚(酚：氯仿：异戊醇25：24：1)，先颠倒混匀后静置抽提10分钟，离心4度12000g10分钟。（注意酚在油层下面）4取上清（把枪头去掉部分，注意液面。蛋白质凝胶停留在水相及氯仿相中间，而DNA位于上层水相中），加入等体积CI(氯仿：异戊醇24：1)，先颠倒混匀后静置抽提10分钟，离心4度12000g10分钟。5汇集上清，加2倍无水乙醇(-30度保存)，颠倒混匀可观察到絮状DNA。在-30度冰箱沉淀30min。离心4度12000g10分钟。6弃去上清，75%乙醇洗涤，7500g离心5

3、分钟。7重复一次上述操作。7在无菌台干燥半小时，乙醇挥发。8溶解于200ulddwater。9定量DNA。裂解液的配制1ml体系200ul0.5MEDTA（PH=8.0高压灭菌。作用抑制酶的活性。）螯合DNA酶发挥作用需要的金属离子。50ul10%SDS（蛋白质变性剂）10ul1MTris-cl（PH=8.0高压灭菌）缓冲溶液5ulPK（消化）735ul灭菌超纯水EDTA（0.5M，pH8.0）将186.1g二水乙二胺四乙酸二钠（EDTA-Na.2H2O）加入800ml水中，在磁力搅拌器上剧烈搅拌。用NaOH调节pH值至8.0（约需20gNaOH颗粒），定容至1L。分装

4、后高压蒸汽灭菌。EDTA二钠盐加入NaOH将溶液的pH值调至接近8.0时，才会溶解。实验二目的DNA片段的获得（酶切）获得了包含目的基因在内的DNA，这些DNA或来自于目的生物基因组DNA或来自目的细胞mRNA逆转录合成的双链cDNA。由于基因组DNA较大，不利于克隆，必须将其处理成适合克隆的DNA小片段，常用的方法是核酸限制性内切酶消化。仪器：台式离心机、恒温水浴、取液器、电泳仪、电泳槽、紫外观测仪试剂EcoRⅠ,HindⅢ酶,DNA样品（浓度>0.3μg/μl）1XTAE缓冲液。操作(一)EcoRⅠ单酶切。1,取1支干净、灭菌新Eppendof管，分别按下表加入（u

5、l）灭菌水13EcoRⅠ缓冲液2DNA43ugEcoRⅠ１10U20ul体系。２，37℃保温１－4小时，也可过夜。3，保温结束后65-70℃10min灭活酶(如为热稳定性酶,则用氯仿抽提)。4，取10μl左右的反应液加入1μl电泳加样缓冲液，电泳。目的片段回收。注意：１，样品加入次序为水、缓冲液、DNA最后为酶，不应颠倒。２，加酶步骤要在冰浴中进行，在加酶前应先将水、缓冲液及待切DNA混匀。３，反应体系的体积要尽量少，要保证所加酶的体积不高于总体积的1/10。4，为了控制反应体积和促进反应进行，要求模板DNA的浓度应很高，因此如底物DNA浓度过低则应进行真空浓缩。实验三

6、LB培养基的配制LB培养基是一种应用最广泛和最普通的细菌基础培养基。含有酵母提取物、蛋白胨和NaCl。其中酵母提取物为微生物提供碳源、能源和磷酸盐，蛋白胨主要提供氮源，NaCl提供无机盐。在配制固体培养基时还要加入一定量琼脂作凝固剂。琼脂在常用浓度下96℃时溶化。琼脂在40℃时凝固（高压灭菌融化琼脂糖），通常不被微生物分解利用。固体培养基中琼脂的含量根据琼脂的质量和气温不同而有所不同。LB培养基用来培养细菌，将其pH调至中性或微碱性，利于细菌生长繁殖。器材和试剂酵母提取物，蛋白胨，NaCl，琼脂，氨苄青霉素(Amp)；1mol/LNaOH；锥形瓶，烧杯，量筒，玻璃棒，细

7、菌培养皿，培养基分装器，天平，牛角匙，高压蒸汽灭菌锅，pH试纸，记号笔，纱布，封口胶。1000ml体系LB液体培养基：参考《分子克隆实验指南》在950ml去离子水中加入:胰化蛋白胨(bacto-typtone)10g，酵母提取物(bacto-yeastextract)5g，NaCl10g摇动容器直至溶质溶解.用1mol/LNaOH（大约1ml）调pH至7.4.(适合E.coli的生长)用去离子水定容至1L.在15psi高压下蒸汽灭菌20min.（全过程需要2小时）锡箔。常温保存。氨苄青霉素(Amp)，用无菌水配制成50mg/mL溶液，置-