小鼠肝kupffer细胞分离方法探讨

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1、小鼠肝Kupffer细胞分离方法探讨作者:严茂林王耀东田毅峰赖智德周松强邱福南【摘要】  目的探讨分离BALB/c小鼠肝Kupffer细胞(KC)的方法。方法采用在体酶灌注和离体酶消化、不连续密度梯度离心、选择性贴壁三步法分离KC,并比较链霉蛋白酶、Ⅳ型胶原酶及联用链霉蛋白酶和Ⅳ型胶原酶等3种不同酶消化分离方法所得KC得率及纯度。结果3种不同酶消化分离方法细胞得率分别为(6.32±0.5)×106g-1,(3.66±0.4)×106g-1,(10.3±0.7)×106g-1;细胞纯度分别为(93.2±1.7)%,(90.7±1.5)%,(94.5±1.9)%。结论联合链霉蛋白酶

2、和Ⅳ型胶原酶在体灌注和离体消化是分离小鼠KC的较好方法。【关键词】肝;枯否细胞;离心法,梯密度;小鼠,近交BABLc;细胞分离  肝Kupffer细胞(Kupffer10cell,KC)为定居在肝窦内的巨噬细胞,约占全身单核巨噬细胞总数的80%~90%。肝KC能吞噬、杀灭病原微生物,清除体内的内毒素,并具有抗原递呈、分泌细胞因子等免疫调节作用,同时影响肝细胞、贮脂细胞及内皮细胞的生物学功能[1]。近期发现KC能诱导同种异体T淋巴细胞凋亡,在调节肝移植免疫耐受中发挥重要作用[2]。如何获得较多数量和较高纯度的KC是研究其在机体中作用机制的首要条件。而传统的分离方法往往因数量和纯度

3、不足而影响实验结果。本试验采用在体酶灌注和离体酶消化、不连续密度梯度、选择性贴壁三步法分离KC,探讨分离小鼠肝KC的较好方法。  1材料与方法  1.1材料  1.1.1实验动物BABL/c小鼠,雄性,10~12周龄,清洁级,由四川大学华西医学中心试验动物中心提供(许可证号:046)。试验前禁食12h,自由饮水,随机分为3组。  1.1.2主要试剂和仪器Ⅳ型胶原蛋白酶、DNAaseⅠ、Percoll及HEPES(美国Sigma公司);兔抗人溶菌酶(lysozyme,美国DAKO公司);链霉蛋白酶E(瑞士Roche公司);RPMI1640培养基(美国Gibco公司)。超净工作台

4、(苏州净化设备厂),倒置显微镜(日本Nikon公司),低温高速离心机(美国Beckman公司)。  1.1.3主要液体的配制(1)前灌注液(Hank's平衡盐溶液)。KCl5mmol/L,KH2PO41mmol/L,NaCl115mmol/L,HEPES2510mmol/L。调整pH值为7.4。(2)后灌注液及酶消化液配制。后灌注液、酶消化液均由hank's平衡盐溶液配制。方法1中的后灌注液含0.20%链霉蛋白酶2mL;酶消化液:含0.20%链霉蛋白酶2mL、0.012%DNAaseⅠ2mL;方法2中的后灌注液含0.025%Ⅳ型胶原酶2mL。酶消化液:含0.05%IV型胶原酶2

5、mL;方法3中的后灌注液含0.05%Ⅳ型胶原酶1mL、0.4%链霉蛋白酶1mL;酶消化液:含0.10%Ⅳ型胶原酶1mL、0.40%链霉蛋白酶1mL、0.012%DNAaseⅠ2mL;  1.1.4SPS液的配制100%Percoll液和8.5%NS以9∶1的比例混合,配制成SPS原液;以70%Percoll液2mL配制:SPS1.4mL和PBS0.6mL混合配制所得;30%Percoll液的配制:PBS1.4mL和SPS0.6mL混合配制所得。  1.1.5RPMI1640完全培养基的配制按说明书配制,0.22μm滤器过滤除菌,临用前加入10%新鲜灭活的小牛血清,青霉素100

6、U/mL,链霉素100μg/mL。  1.2BABL/c小鼠KC分离方法  1.2.1原位肝脏灌注步骤参考文献[3]。  1.2.2肝脏非实质细胞的提取及离心将上述肝细胞滤液4℃离心(800r/min×8min),取沉淀。加入PBS4mL,4℃离心(80r/min×3min),除去沉淀,取上清。加入PBS4mL充分混匀,再次以4℃10离心(150r/min×8min),取沉淀。沉淀加入PBS2mL,充分混匀。取10mL离心管1支,依次加入70%Percoll、30%Percoll、细胞悬液各2mL及少许PBS,4℃离心(1600r/min×22min)。离心管自上而下依次为:细

7、胞碎片、30%Percoll层、30%Percoll层与70%Percoll层之间的是大量KC及少量肝窦内皮细胞、70%Percoll层、离心管底层为少许红细胞。取30%Percoll和70%Percoll层之间的白色物,PBS8mL稀释细胞,4℃离心1次(600r/min×8min),4℃分别离心(150r/min×8min)2次,除去上清。  1.2.3KC贴壁培养将上述细胞沉淀用适量10%胎牛RPMI1640稀释,取10μL用台盼蓝染色检测细胞活性及细胞计数,分别计算3种方法的KC得率

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