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时间:2018-07-10
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1、肿瘤坏死因子α对背根神经节电压门控性钠通道表达的影响:臧颖何昕华庞瑞萍魏绪红信文君周利君李永勇刘先国【摘要】【目的】探讨肿瘤坏死因子α(TNF-α)对背根神经节(DRG)电压门控性钠通道(Nav1.3)表达的影响,并探讨其在神经病理性疼痛形成中的可能作用。【方法】采用免疫荧光组织化学方法和免疫荧光细胞化学方法,观察外源性重组TNF(rrTNF)对在体大鼠和离体培养的大鼠DRG神经元Nav1.3表达的影响。【结果】①不损伤任何神经,仅在大鼠坐骨神经周围给予100pg/mL的rrTNF可引起病理性疼痛的产生,并引起L5和L4DRG神经元内Nav1
2、.3显著上调;②在分离培养的正常成年大鼠DRG神经元表面直接给予100pg/mLrrTNF显著诱导Nav1.3表达上调,其上调分布于DRG神经元的胞膜和胞浆,并以胞膜上调更为显著。【结论】TNF-α在神经病理性疼痛形成中具有重要作用,外周神经损伤可能通过DRG内TNF-α的上调,促发Nav1.3异常表达,由初级感觉传入异常兴奋,参与病理性疼痛的产生。【关键词】肿瘤坏死因子-α;钠通道;背根神经节;病理性疼痛 Abstract:【Objective】TodiscusstheeffectofTNF-αontheexpressionoftetrao
3、dontoxin-sensitiveNav1.3channelsindorsalrootganglion(DRG)andfurthertoexplainthemechanismresidedinthedevelopmentofneuropathicpain.【Method】-7:00PM。为尽量减轻动物在实验中的痛苦,所有实验步骤均按照实验动物的相关使用原则操作。 1.2慢性坐骨神经周围给予rrTNF模型(PSTmodel) 此模型是在大鼠清醒状态下,通过导管在其坐骨神经周围反复多次给予rrTNF得以实现。如图1所示,大鼠在4g/L戊巴比
4、妥钠(40mg/kg)腹腔注射麻醉下,左后肢背侧经备皮、消毒后,沿坐骨神经走行方向做一斜向中线的斜行切口,用玻璃分针小心分离出后肢中段水平的坐骨神经,将一端连有PE-10导管(6cm)的无菌明胶海绵(15mm×5mm×9mm)包裹于已分离出来的坐骨神经周围,并将导管固定于周围肌肉上,用3-0医用缝合线逐层缝合切口,暴露于切口外的导管埋置于皮毛中,通过导管分别于手术中及术后1、2d给予200?滋LrrTNF或假手术组仅给予200?滋LrrTNF的溶剂——1g/L牛血清白蛋白(bovineserumalbumin,BSA)盐水,给药结束后用烧热的
5、镊子封闭管口。 1.3免疫组织化学 1.3.1动物灌注和标本处理 大鼠在按实验设计饲养规定的时间后,用乌拉坦(氨基甲酸乙酯,1.5g/kg)腹腔注射麻醉,先后用生理盐水和40g/L多聚甲醛溶液(pH7.2~7.4,4℃)对动物进行主动脉灌流固定30min。解剖动物取出同侧L4和L5DRG,多聚甲醛溶液后固定3h,再于300g/L蔗糖溶液中脱水3d。标本经冰冻切片后收集于24孔板内,并置于4℃冰箱短暂保存。具体实验方法参见我们的近期报道[7]。 1.3.2免疫荧光组织化学染色及定量分析 将DRG冰冻切片用0.01mol/LPBS洗3次
6、,每次5min,加入封闭液1h,吸去封闭液并加入抗-Nav1.3抗体(1:100;Sigma,St.Louis,USA)。4℃过两夜后,吸去一抗,加入标记Cy3的IgG(1:300;JacksonImmunoResearch,PA),避光作用1h后贴于载玻片上,于荧光显微镜下观察并拍照。免疫染色结果的定量分析是通过计数每张切片上的Nav1.3免疫活性(Nav1.3immunoreactivity,Nav1.3-IR)阳性细胞的百分比获得的。具体实验方法和定量分析参见我们的近期报道[7]。 1.4成年大鼠DRG神经元的分离培养 正常雄性SD
7、大鼠,麻醉、低温下,迅速取出腰骶部脊柱,尽量剪净脊柱两侧的肌肉组织。把脊柱从正中剪开,分成左右两半,放入解剖液中(DMEM液)。从解剖液中取出脊柱,用镊子取出脊髓,轻轻取出双侧椎间孔中的L4、L5、L6DRG放入含解剖液的培养皿中。用巩膜剪剪除DRG上的神经根,吸干培养皿中的解剖液,尽量剪碎DRG。然后将剪碎的DRG放入消化液(1.25g/L胰酶+1.25g/L胶原酶)37°C振荡消化15~20min,加入血清终止消化。静止5min,取上清液于另一离心管中,800×g离心5min。弃上清,加入培养基(DMEM-F12+100g/L胎牛血清)重
8、悬沉淀,并滴于24孔板或盖玻片中,置CO2培养箱(体积分数为95%空气+5%CO2)孵育培养3~5d。 1.5免疫细胞化学染色及定量分析 将培养于盖玻片上的细胞
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