欢迎来到天天文库
浏览记录
ID:36753806
大小:72.18 KB
页数:11页
时间:2019-05-14
《热休克蛋白70减轻帕金森病细胞模型中α突触核蛋白毒性的作用》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在行业资料-天天文库。
1、热休克蛋白70减轻帕金森病细胞模型中α-突触核蛋白毒性的作用【摘要】目的探讨HSP70在因α-突触核蛋白过表达或突变所致的帕金森病(PD)细胞模型中的作用及其机制。方法构建过表达野生型和PD相关突变型(A53T)α-突触核蛋白质粒,转染人神经母细胞瘤细胞(SH-SY5Y)细胞后得PD细胞模型;然后在细胞模型中转染表达HSP70的质粒。采用免疫印迹检测转染HSP70细胞模型中α-突触核蛋白表达量的改变;采用MTT法检测转染HSP70后细胞模型活力的变化。结果转染HSP70后,细胞模型α-突触核蛋白表达减少,细胞活性增加。结论HSP70通过降
2、低α-突触核蛋白表达水平对PD细胞模型发挥保护作用。【关键词】α-突触核蛋白;热休克蛋白70;过表达 α-突触核蛋白是一种在中枢神经系统突触前表达的可溶性蛋白,具有调节膜稳定性和神经可塑性等生理功能。近年研究发现,α-突触核蛋白基因过表达或突变可引起α11-突触核蛋白的错误折叠、有毒蛋白寡聚体和多聚体的形成,使其结构和功能障碍,从而启动一系列级联反应致多巴胺能系统损伤,最终导致帕金森病(PD)。研究认为神经保护剂可能是治疗PD的一个新的有效途径,而热休克蛋白70(HSP70)就是其中之一。HSP70是分子伴侣家族中的一员,作为一种重要的应
3、激蛋白,能与 错误折叠的蛋白相互作用,阻止聚集物的形成;除此之外,HSP70还有助于错误折叠蛋白的降解〔1,2〕。在果蝇及酵母的PD模型中发现,HSP70能减轻α-突触核蛋白的毒性及其引起的神经细胞凋亡〔3,4〕,而HSP70抑制α-突触核蛋白毒性可能与其能够与α-突触核蛋白相互作用,阻止α-突触核蛋白纤维样聚集,降低α-突触核蛋白表达量有关〔5,6〕。为进一步证实HSP70在α-突触核蛋白所致PD的作用,本实验首次在神经母细胞瘤细胞(SH-SY5Y)PD模型中检测了HSP70的作用及机制,发现HSP70可以通过降低α-突触核蛋白水平发挥
4、对PD细胞模型的保护作用。 1材料与方法 1.1实验材料SH-SY5Y细胞购自ATCC公司;限制性内切酶购自Takara公司;QIAprepTIP100Kit购自QIAGEN公司;人胎脑cDNA文库、胎牛血清(FBS)、Lipofectamine2000购自Invitrogen公司;蛋白酶抑制剂cocktail购自Sigma公司;anti-α-synuclein204抗体、anti-beta-actin抗体购自Santacruz公司;聚偏二氟乙烯(PVDF)膜购自Millipore公司。 1.2方法 1.2.1质粒构建以人胎脑cD
5、NA文库为模板,PCR获得α-突触核蛋白可编码序列(CDS序列)以NotⅠ和HindⅢ11连接到pCDNA3.1真核表达载体中,通过overlapPCR方法,构建A53T突变体,同样以NotⅠ和HindⅢ连接到pCDNA3.1真核表达载体中。按照QlAprepTIP100KitProtocol抽取并纯化质粒,测序证实。pCDNA3.1-HSP70质粒由湘雅二医院肝移植中心李杰群博士惠赠。 1.2.2细胞培养与转染SH-SY5Y细胞采用含10%FBS的高糖DMEM培养液,置于37℃,5%CO2的培养箱培养。转染严格按照Lipofectam
6、ine2000说明书进行。用不含FBS的DMEM培养基洗涤细胞2次,24孔细胞培养板每孔加入含2μlLipofectamine2000及0.8μg质粒DNA、不含FBS的DMEM培养基500μl,在37℃,5%CO2的培养箱中孵育3h,改用含10%FBS的DMEM培养基继续孵育48h。 1.2.3免疫荧光将稳定表达蛋白的SH-SY5Y细胞接种到有盖玻片的24孔板中,用含10%FBS的DMEM培养于37℃、5%CO2培养箱中36h后,弃去培养基,3.7%的多聚甲醛/磷酸缓冲液(PBS)室温下固定15min。PBS洗2次,每次5min。0.
7、2%的TritonX-100/PBS透化10min,PBS洗2次,5%牛血清白蛋白(BSA)封闭液,室温封闭30min。加入1∶400稀释的anti-α-synuclein204一抗室温孵育60min,PBS洗3次,每次5min。5%BSA封闭液,室温封闭20min。加入1∶200稀释的anti-鼠IgG-Cy2二抗100μl,避光室温下孵育60min。1×PBS洗3次,每次5min。4,6-二氨基-2-苯基吲哚(DAPI)染细胞核,室温,避光反应2min。PBS洗2次,每次511min。去离子水洗1次,封片,用激光共聚焦显微镜扫描和照相
8、。 1.2.4免疫印迹取细胞,吸去培养基,加入2×十二烷基硫酸钠(SDS)samplebuffer(125mmol/LTrisHCl,20%Glycerol,4%SDS,0.1%bromph
此文档下载收益归作者所有