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时间:2019-02-02
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1、学位论文版权使用授权书江苏大学、中国科学技术信息研究所、国家图书馆、中国学术期刊(光盘版)电子杂志社有权保留本人所送交学位论文的复印件和电子文档,可以采用影印、缩印或其他复制手段保存论文。本人电子文档的内容和纸质论文的内容相一致,允许论文被查阅和借阅,同时授权中国科学技术信息研究所将本论文编入《中国学位论文全文数据库》并向社会提供查询,授权中国学术期刊(光盘版)电子杂志社将本论文编入《中国优秀博硕士学位论文全文数据库》并向社会提供查询。论文的公布(包括刊登)授权江苏大学研究生处办理。本学位论文属于
2、不保密口。学位论文作者签名:南。蚨珈If年‘月J弓日指导教师签名:矽11年幽门螺杆菌cag.PAI基因cagX功能的实验研究STUDYONTHEFUNCTIoNOFCAGXGENEoFTHECAG.PAJINHELICOBACTERPYLoRI2011年6月江苏大学硕士学位论文摘要目的:构建ffaf31.i杆菌(Helicobacterpylori,Hpylori)cagPAI中基因cagX缺失株,探讨该基因对cagY、cagW、cagN基因表达的影响、在CagA转运过程中的作用及对细胞GES.1
3、IL-8mRNA表达能力的影响;提取并纯化CagX重组蛋白,免疫BAI_B/c小鼠,制备多克隆抗体,明确CagX的亚细胞定位及与尿素酶、过氧化氢酶等的关系。为深入探讨幽门螺杆菌的致病机制研究奠定基础。方法:1.根据GenBank中收录的且pylori26695全基因组序列,设计扩增cagX基[]缺失株的同源臂引物,用PCR方法从H/:,y/or/NCTC11637基因组DNA中扩增c口g堪因同源臂片段,将克隆片段连-至pMDl8.T载体,转化大肠杆菌DH5a,再将片段定向插入含卡那抗性pBlueK
4、M40载体中,经酶切鉴定分析,将自杀质粒命名为pBlueKM40一AcagX;2.构建好的自杀质粒与且py/or/11637转入电击杯,利用同源重组原理,构建cagX基因缺失株,自杀质粒电击转化进入幽门螺杆菌,通过抗生素平板进行传代筛选,通过PCR方法验证cagX基因缺失株Hpylori11637AcagX的获得,提取cagX基因缺失前后细菌总RNA,逆转录为eDNA,以eDNA为模板PCR检测基因cagY,cagW,cagN的表达;3.将cagX基因缺失株和野生株与正常胃上皮细胞GES一1进行共
5、培养,然后采用Westernblot的方法检测Hpylori转运CagA蛋白的能力,提取细胞总RNA,采用实时荧光定量PCR检测IL-8mRNA的表达;4.将原核表达的CagX蛋白用Ni2+-NTA柱进行分离纯化,纯化的蛋白CagX与弗氏佐剂充分乳化后,免疫BALB/c小鼠,制备多克隆抗体,酶联免疫吸附试验(enzyme-linkedimmunosorbentassay,ELISA)检测血清中抗体效价;5.收集且pylori,重悬并裂解菌体,收集细菌总蛋白,经超高速离心分离得到菌体各组分蛋白,包括
6、周质间隙蛋白、胞质蛋白及内外膜蛋白,利用WesternBlot法检测CagX蛋白的亚细胞定位;细菌总蛋白再与proteinA/Gplusagarose珠子混合,利用CagX抗体分离出相关蛋白,SDS.PAGE分析与CagX相关的蛋白;幽门螺杆菌cag-PAI基因cagX功能的实验研究结果:1.经过PCR及与载体连接,成功构建了幽门螺杆菌cagX基因的自杀质粒pBlueKM40--AcagX,经电击转化抗生素筛选获得了cagX基因的缺失株。2.提取且pylori野生株及cagX基因缺失株总RNA,逆
7、转录为eDNA,并以其为模板检测cagX上下游基因cagW、cagT伴侣蛋白cagN基因表达变化,结果显示cagX基因缺失后,上下游基因表达量均受到影响,而cagN基因表达并没有变化。3.将野生株与cagX基因缺失株分别与正常胃上皮细胞GES.1共培养后,Westernblot检测结果发现,cagX基因缺失株处理组中未检测到的CagA的转运,而野生株中CagA转运成功。4.野生株与cagX基因缺失株分别与正常胃上皮细胞GES.1共培养后,提取细胞的总RNA逆转录成eDNA后,RT-PCR检测细胞因
8、子ID8mRNA的表达,结果发现cagX基因缺失后IL-8mRNA表达受到影响;5.cagX-pET32a原核表达重组质粒,在浓度lmmol/LIPTG,温度30℃,诱导时间4h条件下诱导,利用Ni2+_NTA柱进行分离纯化;纯化的CagX蛋白免疫BALB/e小鼠,获得CagX融合蛋白多克隆抗体,效价为1:3.2x105;WesternBlot结果显示CagX蛋白定位于菌体内外膜;免疫共沉淀及质谱结果发现,CagX与尿素酶、过氧化氢酶等有关。结论:成功构建了cagX基因自杀质粒及缺
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