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时间:2018-05-02
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1、葡萄皮花色苷的提取及稳定性研究(二) 3结果与讨论 3.1单因素实验 3.1.1提取温度对葡萄皮花色苷提取的影响实验结果分析 在提取液乙醇浓度为60%,提取液pH1.0的条件下,于30℃、40℃、50℃、60℃、70℃下提取葡萄皮中的花色苷,结果见图3-1。图3-1提取温度对葡萄皮花色苷提取的影响 从图3-1可以明显看出,提取温度在30℃-50℃时,葡萄皮花色苷的提取率受提取温度的影响不大。当提取温度上升到50℃以后,随着提取温度的升高,葡萄皮花色苷的提取率有着较大的提高,当提取温度达到60℃时,花色苷的提
2、取率达到最大,温度过高会对花色苷的稳定性产生影响,因此,提取温度为60℃时的提取效果最佳。 3.1.2乙醇浓度对葡萄皮花色苷提取的影响实验结果分析 在温度60℃,提取液pH1.0的条件下,分别用乙醇浓度为0%、20%、40%、60%、80%、95%的酸性乙醇溶液来提取葡萄皮中的花色苷,结果见图3-2。 图3-2乙醇浓度对葡萄皮花色苷提取的影响结果 从图3-2可以明显看出,提取液的乙醇浓度在0-80%之间时,花色苷的提取率随着提取液乙醇浓度的增大而提高,当乙醇浓度达到80%时,花色苷的提取率达到最大。提取液乙醇
3、浓度超过80%以后,花色苷的提取率随着乙醇浓度的升高而有所降低。因此,提取液的乙醇浓度为80%时,花色苷的提取率最高。 3.1.3pH对葡萄皮花色苷提取的影响实验结果分析 在温度60℃,提取液的乙醇浓度在80%条件下,分别用pH为3.0、2.5、2.0、1.5、1.0、0.5的酸性乙醇溶液提取葡萄皮的花色苷,结果见图3-3。 图3-3pH对葡萄皮花色苷提取的影响结果 从图3-3可以明显看出,花色苷的提取率随着提取液pH增大而减小,pH值越低提取率越高,说明提取液中较强的酸性有利于葡萄皮中花色苷物质的浸出。当提
4、取液的pH为0.5时,花色苷的提取率达到最高。因此,提取液pH为0.5时的提取效果最好。 3.2正交实验 3.2.1正交实验的结果及分析 根据提取温度、提取液乙醇浓度、提取液pH等单因素试验的结果,以提取温度、乙醇浓度、pH值三个因素作为研究对象,分别设三个水平,按L9(33)正交表进行正交试验,以花色苷提取液吸光值为考察指标,选出葡萄皮花色苷的最佳提取条件。见表3-1因素水平表。表3-1葡萄皮花色苷提取因素水平实验表代号ABC水平温度℃pH乙醇浓度%1235060700.51.01.5608095 试验安排
5、中的各个因素是随机安排的,每一行为一个试验。试验结果及分析见表3-2L9(33)正交试验结果及分析。 表3-2正交试验结果及直观分析表试验号ABC吸光值温度pH乙醇浓度11110.42521120.44131130.40241210.37451220.35561230.35071310.33081320.31791330.309102110.475112120.507122130.483132210.407142220.412152230.398162310.346172320.349182330.3531931
6、10.373203120.397213130.365223210.349233220.337243230.341253310.307263320.299273330.310K13.3043.8683.386T=10.152K23.7303.3233.414K33.1182.9203.311k10.3670.4300.376k20.4140.3690.379k30.3460.3240.368R0.0680.1060.011 表3-2中K1行的数值,即依次为KA1、KB1、KC1表示为因素A在1水平时所对应OD530值
7、之和,即KA1=0.425+0.441+0.402+0.374+0.355+0.350+0.330+0.317+0.309=3.304。KB1、KC1同理。 表3-2中K2行的数值,即依次为KA2、KB2、KC2。KC2表示为因素A在2水平时所对应的OD530值之和,即KA2=0.457+0.507+0.483+0.407+0.412+0.398+0.346+0.349+0.353=3.730。KB2、KC2同理。 表3-2中K3行的数值,即依次为KA3、KB3、KC3。KC3表示为因素C在3水平时所对应的OD5
8、30值之和,即KA3=0.373+0.397+0.365+0.349+0.337+0.341+0.307+0.299+0.310=3.118。KB3、KC3同理。 表3-2中k1行的数值,即依次为kA1、kB1、kC1。kA1=KA1/9=3.304/9=0.367。kB1、kC1同理,k2、k3行的数值所得的方法与k1同理。 表3-2中R
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