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时间:2018-05-01
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1、Ghrelin对高糖诱导心肌细胞凋亡的影响【关键词】Ghrelin;高血糖;心肌细胞;凋亡caspase3 心肌细胞凋亡是糖尿病心肌病主要病理改变之一,长期心肌细胞凋亡的发生,将会导致临床早期心肌舒张功能障碍、晚期合并心肌收缩功能障碍及心力衰竭的形成〔1〕。近期研究发现,Ghrelin可以抑制多种细胞的凋亡,如成骨细胞、胰岛β细胞、脂肪细胞、内皮细胞及神经元等,但Ghrelin对高糖环境下心肌细胞凋亡影响的相关文献报道较少。因此,本实验以高糖环境培养心肌细胞,Ghrelin作为干预因素,旨在探讨Ghrelin对高糖诱导心肌细胞凋亡的
2、影响,从而为糖尿病心肌病的防治提供新思路。 1材料与方法 1.1材料 1.1.1细胞 新生1~3d的SD大鼠的心肌细胞(重庆医科大学动物实验中心提供)。 1.1.2主要试剂 Ghrelin(美国PhoenixBiotech公司),DMEM培养基(Gibco公司),胎牛血清(Hyclone公司),Ⅱ型胶原酶及胰酶(均购于Sigma公司),PBS、αactin单克隆抗体、SABC试剂盒、TUNEL检测试剂盒及DAB显色试剂盒(均购于武汉博士德生物技术公司),caspase3活性检测试剂盒(购于南京凯基生物公司)。 1.2实
3、验方法 1.2.1原代心肌细胞的分离与培养 取出生1~3d龄SD大鼠10~15只,无菌条件下取心脏,仔细剥离心包膜去除心房及大血管,剩余组织于PBS液中漂洗多次,放于青霉素小瓶侧壁上,用眼科剪将心组织剪成约1mm3碎块。加入5倍体积的0.08%胰蛋白酶,反复吹打后36℃水浴消化7min,静置,待自然沉降后弃上清。剩余沉淀再加入约5倍体积0.08%胰蛋白酶及Ⅱ型胶原酶1∶1混合液,置36℃水浴消化5~8min,静置后将上清液移入10ml离心管中,反复吹打至无细胞团块后用等体积含10%胎牛血清的DMEM培养液终止消化。剩余沉淀用同样条件
4、及方法继续消化,一般经8~10次消化即可将组织消化完毕。各次消化产物以1000r/min离心8min,弃去上清液后将细胞重悬于含15%胎牛血清的DMEM培养液,然后接种于50ml培养瓶,37℃,5%CO2培养箱中孵育1.5h去除贴壁的成纤维细胞。轻轻吸出上层细胞悬液,调整接种密度,将细胞接种于24孔板(板底铺盖玻片),置37℃,5%CO2培养箱中培养(培养液中加入5溴脱氧尿嘧啶0.1mmol/L,以抑制成纤维细胞增殖),培养48h换液,以后每2d换液1次。 1.2.2台盼蓝拒染实验检测原代心肌细胞存活率 将0.4%台盼蓝溶液与细胞
5、悬液等比例混匀,滴入细胞计数板,2min后于倒置相差显微镜下计数,未着色的为活细胞,呈蓝色的为死细胞,计算细胞存活率〔%,活细胞数/(活细胞数+死细胞数)×100%〕,重复3次。 1.2.3心肌细胞纯度鉴定 细胞培养第3天取出细胞爬片,4%多聚甲醛固定30min后,用0.01mol/LPBS漂洗3次。加入3%H2O2消除过氧化氢酶,封闭血清,室温封闭30min后加入以1∶300稀释的兔抗大鼠特异性αactin抗体于4℃孵育过夜。然后分别用荧光标记的山羊抗兔IgG抗体37℃避光孵育60min。PBS清洗3次后立刻荧光显微镜下观察,绿
6、色荧光染色的细胞即为阳性心肌细胞。阳性细胞百分率(%)=阳性细胞数/细胞总数×100%,重复3次。 1.2.4实验分组 原代心肌细胞培养3d后进行实验分组,分为以下3组:①正常对照组(N组):葡萄糖浓度为5.5mmol/L;②高糖组(H组):葡萄糖浓度为25.0mmol/L;③高糖+Ghrelin组(G组):酰基化Ghrelin终浓度为107mol/L,葡萄糖浓度为25.0mmol/L。 1.2.5TUNEL法检测心肌细胞凋亡 将各组细胞爬片用PBS洗3次后,4%多聚甲醛固定30min,采用TUNEL法检测细胞凋亡情况,同时设
7、置阳性与阴性对照。检测结果判断:光镜下阳性细胞为细胞核中有深浅不一的棕黄色颗粒(DAB显色)。而正常非凋亡细胞及阴性对照胞核被苏木素复染呈蓝色。凋亡细胞分析:计数200倍视野下的凋亡细胞数及细胞总数,每组拍摄10个视野,计算凋亡细胞百分率(凋亡细胞/心肌细胞总数×100%),重复5次。 1.2.6caspase3活性测定 按照caspase3活性试剂盒说明书进行操作。收集各组实验细胞,PBS清洗2次,2000r/min离心5min,去除PBS。沉淀细胞中加入50μl预冷裂解液和0.5μlDTT。吹打,冰上裂解60min,期间涡旋
8、4次,每次10s,4℃10000r/min离心1min,吸取上清至新管中置冰上,测蛋白浓度。各组应采用同样蛋白量进行实验,加入50μl的2×ReactionBuffer和0.5μlDTT,加入5μlcasp
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