TA克隆常见问题及解决方案.doc

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1、TA常见问题分析及其解决方案问题可能的原因建议1转化后无菌产生转化过程有问题或感受态细胞失活可通过转化pUC18/19等未切割的可用于抗性筛选的质粒，检测感受态细胞的转化效率和转化操作是否正确插入2对照DNA片段的阳性率低10×快速连接缓冲液稀释不当提供的T4连接酶缓冲液为十倍浓度，10μl反应体积加1μlT4连接酶缓冲液连接反应存在问题连接缓冲液只有低的活性。10×快速连接缓冲液含有ATP，温度波动ATP易降解。使用一次性分装的缓冲液，避免其反复冻化通过凝胶比较连接的和未连接的DNA片段并检查分子量标准DNA

2、片段是否被连接成高分子量的片段，用大约20ngDNA分子量标准（如LambdaDNA/HindIII分子量标准）建立一个连接反应以检测连接酶及缓冲液的活力3T突出端丢失，引起载体平端连接，因而蓝色菌落数高于白色菌落数避免核酸外切酶的引入，降解T突出端。只使用无外源核酸酶的T4连接酶插入片段与插入对照DNA相比，白色菌落的比例低。如果使用的感受态细胞的转化效率很高（≥1×109cfu/µgDNA），则是连接反应存在问题如果使用1×109cfu/µgDNA的感受态细胞，用试剂盒中的阳性对照进行连接实验，白色菌落的比

3、例应为70－90％。如连接反应没有优化或失败，虽然转化的总菌数很高（≥1×109cfu/µgDNA感受态细胞可获得高至300个菌落），但白色菌落很少或没有。参见以上“连接反应存在问题”中的建议对策采用插入对照DNA片段，连接转化时白色克隆菌数低于60％。10×快速连接缓冲液稀释不当提供的T4连接酶缓冲液为十倍浓度，10μl反应体积加1μlT4连接酶缓冲液T突出端丢失，引起载体平端连接，因而蓝色菌落数高于白色菌落数。避免核酸外切酶的引入，降解T突出端。只使用系统自己提供的T4连接酶，这种连接酶外切酶活力最低连接温

4、度太高连接温度过高（>28℃）可使背景增加，使重组克隆菌减少。降低连接温度可以提高白斑率PCR产物连接时白色菌落数很少或根本没有。10×快速连接缓冲液稀释不当提供的T4连接酶缓冲液为十倍浓度，10μl反应体积加1μlT4连接酶缓冲液连接孵育时间不够长连接过夜可得到理想结果PCR产物中含有抑制连接的成分，导致连接的失败将PCR产物和连接反应对照混合，观察是否存在抑制效应。如怀疑有抑制成分存在，应重新纯化PCR产物PCR产物没有3’-A突出端，不能连接。并非所有DNA聚合酶都产生3’-A突出端，如Pfu酶的PCR产

5、物为平端。平端PCR产物可先通过聚合酶及dATP进行加尾反应产生3’-A突出端，再与T载体连接由于紫外灯过度照射形成嘧啶二聚体，PCR产物不能连接。PCR产物已经插入，但未破坏lacZ基因的翻译框。插入片段：载体连接比例不理想。连接的PCR片段中可能有引物二聚体PCR反应扩增的多种产物克隆到pGM-TEasy或pBS-T载体中。DNA重排检测大量克隆观察重排是否是随机的。如果是随机重排，通过筛选可得到有目的DNA片段的克隆菌，而如果所有克隆是一种重排方式，则需要使用修补缺陷的菌株保护插入片段，减少重排事件的发生

6、PCR连接反应只产生白色克隆（没有蓝色克隆）氨苄失活，因而氨苄敏感菌可生长。检查氨苄平板是正常制备并在一个月内使用菌株（如TOP10）丧失F’因子检测背景对照，如果菌落不是蓝色的，则可能是宿主菌细胞丢失F’因子（假设acIqZ.M15位于宿主菌的F’因子上，并使用正常平板）。用于T-载体系统的感受态细胞一定要正确制备平板不适合蓝白斑筛选。检测背景对照，如果克隆菌不是蓝色的，检查平板是否含有氨苄/IPTG/X-Gal以及是否新鲜。如平板有问题，重新制备新鲜平板含有目的PCR产物的克隆菌数不够。PCR片段很多没有A

7、尾。将PCR产物纯化后进行加尾反应。样品纯化后进行连接反应插入片段：载体比例不理想。凝胶电泳检测PCR产物的完整性及产量，优化插入片段多个PCR产物被克隆进pGM-T或pBS-T载体凝胶纯化目的PCR产物