原代心肌细胞培养.doc

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1、1材料　　1.1动物　　出生后1-4天SD乳鼠15只。　　1.2试剂　　低糖DMEM、胰酶(含EDTA)、青链霉素、碳酸氢钠液、新生牛血清、谷氨酰胺、D-Hank's液。0.1%新洁尔灭、碘酒、75%酒精。　　培养液：培养液(DMEM，新生牛血清，青链霉素)。　　1.3手术器械和仪器　　铝盒、眼科直剪、眼科弯剪、眼科直镊、眼科弯剪、玻璃培养皿(共2套，一套用于解剖取材，另一套用于剪碎心脏组织)、100ml广口瓶两个(分别装碘酒和酒精棉球)、500ml烧杯、250ml锥形瓶、15ml和50ml的离

2、心管，磁力搅拌器和搅拌子(或者水浴振荡器)、150-200目尼龙筛网和针式滤器。　　2方法　　2.1将胰酶用D-Hank's液配成0.06%的浓度，并放置于37℃水浴中温育好。　　2.2解剖取材：将乳鼠放入0.1%新洁尔灭浸泡一下后拿出，用另一把大镊子取碘酒棉球擦皮肤，再用酒精棉球脱碘。左手捏紧乳鼠颈背部皮肤以充分展露胸部，右手取一把眼科直剪剪开皮，充分撕拉开，再用酒精棉球消毒后，取一把眼科弯剪沿胸骨柄左下缘向上剪开肋骨，然后在切口中间横剪胸骨。这样只要左手稍顶，乳鼠的心脏就直接跳出来。然后用眼

3、科弯镊从心脏中部直接将心室部分剪下，放入冰浴的D-Hank's液中。重复以上过程。取材完毕后，撤掉取材的手术器械。注：为了保证心肌细胞的活力，取心的操作过程尽量快，另外，最好把盛的心脏的培养皿放置在冰台上或者预冷的平衡盐液中。　　2.3用第二套手术器械进行下列操作。用眼科直镊和眼科弯剪把培养皿中的心脏周边的血凝块及纤维组织剔除掉，放在另一个预先装好D-Hank's液的培养皿中，把心脏组织再洗一遍后，将心脏组织放在另外一个培养皿中(或者其它合适容器中，视个人习惯)，加少许0.06%胰酶，用眼科弯剪

4、将心脏组织剪成1mm3大小的碎块，将剪碎的心脏和胰酶液转入加了搅拌子的锥形瓶中，另外吸取2-3ml新鲜的胰酶冲洗平皿和剪刀并转入锥形瓶中，补加胰酶至终体积10ml，加上塞子，放在37℃水浴中(可以用一个消毒的500ml烧杯，装好无菌的蒸馏水，加够水量，水位线稍低于250ml锥形瓶的刻度线即可，过少则温度会不均匀，过高容易污染。打开磁力搅拌器电源，预先将水温调节到37℃)，调节转速至60rpm左右，消化15min(务必保证水浴温度恒定在37℃，并且消化时间不超过15min)。或者，如果采用的是水浴

5、震荡器的话，不用加搅拌子，直接放在水浴震荡器中消化亦可，转速和消化时间相同。　　2.4从水浴中取出锥形瓶，小心吸去上清，上清中的主要成分是血红细胞和成纤维类细胞。　　2.5加入10ml新的胰酶，用一支新的吸管吹打溶液几次，机械分散细胞(组织消化后会成为粘稠的胶体状)，注意：不要过分吹打，否则会导致组织过度消化，37℃水浴搅拌再消化10-15min;如果乳鼠数目少(比如5、6只的时候)，消化时间可以减少为5-10min，否则很容易消化过度。上述消化处理的同时，往一支50ml的一次性无菌离心管中加入

6、20ml预冷的含10%血清的培养液，并放置冰台上。消化处理之后，小心移出上清转至上述加有培养液的离心管中，第一次消化收集的分离出的细胞，第一次消化结束后;继续第二次消化，余下的组织块加入10ml新胰酶继续消化。　　2.6重复2.5消化步骤，直至剩余少许组织块为止，一般消化4-5次可以消化绝大多数的组织块(不含弃去消化液的那次)。　　2.7第1、2次含细胞的消化液放在一根离心管中，过180目筛网后，一起离心;第3、4次含细胞的消化液放在一根离心管中，过180目筛网后，一起离心。最后，分别用8ml含

7、20%血清的培养液重悬两管细胞，接种到一个75cm2的塑料培养瓶中，放置在培养箱中1.5小时后，取出，弃贴壁细胞(主要是成纤维细胞和内皮细胞)，将未贴壁的细胞悬液取出，台盼篮拒染法计数后，加入培养液调整细胞浓度为5-6x105个/ml，接种到目的培养器皿中。　　2.8一般不用加BrdU，如果培养时间长(发现成纤维细胞也极少)，可以加入0.1mmol/mlBrdU(Sigma)以阻止成纤维细胞增殖。加了BrdU，心肌细胞搏动的持续时间会更长。　　2.9接种后24小时，用温的培养基或者平衡盐液轻轻冲

8、洗培养的心肌细胞一次，以去处未贴壁的细胞(部分细胞会在24小时后贴，结果很多细胞重叠生长)，再更换培养液，即可。可以按照实验需要在培养48h或72h后施加处理因素。　　3结果　　心肌细胞刚接种时形状为圆形或椭圆形，大约在24h左右基本贴壁，此时细胞伸出伪足，伪足在镜下为纤维状条索，细胞胞体则呈现不规则形状，如多角形，部分细胞有聚集倾向，细胞搏动效果较好，DMEM培养基在初始培养时为深红色，两天后变为淡黄色，应该是营养成分下降的表现，也说明细胞生长状况良好。我们也参考了一些国外文献的培养方法加以补