凯氏定氮操作步骤.doc

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1、凯氏定氮操作步骤1.消化:精密称取大豆样品1.0g左右,放入干燥的250ml消化管中,加入0.4gCuSO4、7gK2SO4、10mlH2SO4。先200℃炭化,待泡沫停止后提高温度到450℃,加热至液体沸腾,待瓶内液体呈蓝绿色透明后,再继续加热0.5h。冷却后加入20ml水,移入100ml容量瓶中,用少量水洗涤消化管2~3次,洗液合并于容量瓶中定容2.蒸馏:连接凯氏定氮装置,于水蒸气发生瓶内装水至2/3处,加甲基红指示剂数滴及数ml硫酸,保持水呈酸性。加入数粒玻璃珠以防暴沸,调节火力加热煮沸水蒸气发生瓶内的水。3.吸收:向吸收瓶内加入20g/L硼

2、酸溶液20ml及混合指示剂2滴,并使冷凝管下端插入液面以下,吸取10ml样品消化稀释液由进样口进入反应室,并以10ml水洗涤进样口使其流入反应室内,将400g/LNaOH溶液10ml倒入进样口,立即夹紧螺旋夹,并加入少量蒸馏水,密封进样口。当蒸汽通入反应室时,准确计时,反应产生的氨气通过冷凝管进入吸收瓶,蒸馏5min,移动吸收瓶,使冷凝管下端离开液面,再蒸馏1min,然后用少量水冲洗冷凝管下端外部,取下吸收瓶。洗涤:停止加热,使反应室内的液体进入汽水分离器,打开进样口的螺旋夹,将汽水分离器的液体放出。再向反应室内加入蒸馏水,夹紧螺旋夹,再次进行加热

3、至水蒸汽放出,停止加热,使反应室内的水进入汽水分离器,进行洗涤。4.滴定:用0.025mol/L硫酸标准溶液滴定吸收液至灰色。5.计算:X=2cV×14×5.71/mX为样品中蛋白质的含量,%;c为硫酸标准溶液的浓度,mol/L;V为样品消化液消耗硫酸标准溶液的体积,ml;m为样品的质量,g。凯氏定氮法  凯氏定氮法是测定蛋白质的国标方法。2%硼酸溶液是测定方法中碱化蒸馏时所使用的吸收液,用来吸收游离出的氨,然后用盐酸或硫酸标准溶液滴定,根据混合指示剂颜色变化判断终点。  1 试剂与方法  1.1 2%硼酸吸收液的配制方法 (1)将2份0.1%甲基

4、红乙醇溶液与1份0.1%次甲基蓝乙醇溶液混合。(2)将适量上述混合指示剂一次性加入已配制好的2%硼酸溶液中,使溶液呈蓝紫色。  1.2 2%硼酸吸收液使用方法 按照国标方法(GB5009.5―85)操作,在平行试验时,可将已滴定至终点的2%硼酸吸收液重复使用。  1.3 配制方法 配制2%硼酸吸收液时,混合指示剂加入量不宜过多,以透过试剂瓶观察蓝紫色刚好透明为宜。若溶液偏蓝,用0.1%甲基红乙醇溶液调至蓝紫色;反之若偏紫红,可用0.1%次甲基蓝乙醇溶液调至蓝紫色。  1.4 配制后的2%硼酸吸收液可行预试验 即取少量吸收液于试管中,加入1滴氨水(1

5、+2)观察其颜色变化是否明显与正常。  1.5 反应原理 样品中的蛋白质经硫酸和催化剂消化后,分解的氨与硫酸结合生成硫酸铵,然后碱化蒸馏使氨游离,用2%硼酸溶液吸收生成硼酸铵。其反应为:2NH3+4H3BO3→(NH4)2B4O7+5H2O使吸收液由酸性变为碱性,混合指示剂由蓝紫色变为绿色,然后用盐酸或硫酸标准溶液滴定,使混合指示剂再由绿色返至蓝紫色即为终点。重复使用时,仍可按上述原理反应。  1.6 终点颜色 滴定终点观察颜色时,样品消化液终点与空白消化液终点应色调一致。  2 结果  一次使用2%硼酸吸收液的国标方法与重复使用2%硼酸吸收液的新

6、方法进行对照实验,经t检验,t=0.676,P>0.05,两种使用方法差异无显著性。对照实验结果见表1。  表1 对照实验结果(略)  3 讨论  用一次性加入混合指示剂的方法配制2%硼酸吸收液,将已滴定至终点的吸收液重复使用,用于平行实验。这样可简化实验操作,尤其在进行批量样品检验时,对于2%硼酸吸收液可不必逐个滴加混合指示剂,减少50%吸收次数,节约50%用量,从而提高工作效率和经济效益。

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