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时间:2020-04-06
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1、实验九--十植物过氧化物酶同工酶的测定(凝胶圆盘电泳法)生物化学实验之--山东师范大学生命科学学院【实验目的】1.学习聚丙烯酰胺凝胶电泳原理;2.掌握聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳的操作技术;3.学习过氧化物酶同工酶的检测方法。【实验原理】以聚丙烯酰胺为支持介质的电泳称为聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)。聚丙烯酰胺凝胶由丙烯酰胺(Acr)单体和交联剂甲叉双丙烯酰胺(Bis)在催化剂作用下聚合而成,具有三维网状结构,其网孔大小可由凝胶浓度和交联度加以调节。聚丙烯酰胺凝胶结构PAGE电泳兼有电荷效应和分子筛效应。由于被分离物质所载电荷数量、分子大小和形状的差异,因此在电泳时产
2、生不同的永动速率而相互分离。利用特异性的颜色反应使待测酶着色,这样就可以在凝胶中展现出酶谱。为了提高聚丙烯酰胺凝胶电泳的分辨率,通常采用不连续聚丙烯酰胺凝胶系统,即在分离胶上面加一层浓缩胶,因浓缩胶和分离胶中的离子成分、pH、凝胶浓度不同,电泳开始后,由于浓缩效应,较厚的样品层可以被浓缩的很薄,使电泳具有良好的分辨率。过氧化物酶是植物体内常见的氧化酶。它能催化H2O2将联苯氨氧化成蓝色或棕褐色产物。因此,将经过电泳后的凝胶置于H2O2-联苯胺溶液中染色,出现蓝色或褐色的部位即为过氧化物酶同工酶在凝胶中存在的位置,多条有色带即构成过氧化物酶同工酶的酶谱。【器材与试剂
3、】(一)材料小麦芽(二)仪器设备稳流稳压电泳仪、冷冻离心机及离心管、成套电泳槽(圆盘型),pH试纸,其他常规用具(三)试剂1、分离胶缓冲液(pH8.9)2、分离胶贮液3、过硫酸铵溶液4、浓缩胶缓冲液5、浓缩胶贮备液6、电极缓冲液7、四甲基乙二胺(TEMED)8、0.1%溴酚蓝溶液9、联苯胺染色母液【实验步骤】(一)过氧化物酶的提取:取8~12粒发芽的麦粒,加入1mlH2O或0.5mol/LTris-HCl缓冲液(pH6.8),冰浴上研成匀浆。转入离心管,再用2ml上述溶液冲洗研钵壁并全部转入离心管,4000r/min离心10min,上清液供电泳分析用。(二)凝胶的
4、制备1.准备工作:(1)将一空心橡皮塞套在距玻璃管上端2cm处。(2)用封口膜封住玻璃管下端至不漏液体。3.制备小孔胶(分离胶)取2个小烧杯,按A:C:水:F等于1:2:1:3的比例,分别取A液、C液和水置于一小烧杯中,混匀;F液置另一小烧杯中。将两个小烧杯同时放在真空干燥器中同时抽气5~10min,可见有气泡冒出。将2个小烧杯内的液体倒在一起轻轻混匀(勿重新带入空气),用滴管先取少量凝胶液加至玻璃管内并甩几下,使液体置于底部,同时注意观察是否漏胶。然后尽快将其它凝胶液装入至达高度距上端口1cm为止。仔细地向表面加一层水以隔绝空气。此时可见水与胶之间有一界线,但很
5、快消失。将玻璃管垂直固定在一试管中,置25~35℃温箱聚合30~60min,当再次看到水与凝胶之间的界线时,表示聚合完成。吸去表面的水。4.制备大孔胶(浓缩胶)取2个小烧杯,按照B:D:E:F等于1:1.5:1:4的比例,分别取B液、D液和E液置于一小烧杯中,混匀;F液置另一小烧杯中,抽气。将2个小烧杯内的液体轻轻混匀加至小孔胶上面1cm高度,仔细地向表面加一层水。25~35℃聚合20~30min,聚合后的大孔胶呈乳白色。仔细吸去表面的水。(三)电泳1.安装电泳槽:向电泳槽下槽加入适量甘氨酸-Tris电泳缓冲液。去掉玻璃管下端的封口膜,将玻璃管固定在电泳槽上,阴
6、极在上,阳极在下。2.点样:取样品50μL,蔗糖-溴酚篮50μL,混匀,加入玻璃管中。加缓冲液至浸没过玻璃管上端口及电泳槽上盖的电极。排除玻璃管下端口的气泡,连接好电泳仪。3.电泳:开始电流为2~3mA/管,当样品至分离胶时,电流加大到4~5mA/管。当溴酚蓝指示剂接近管底时切断电源,终止电泳。4.剥胶:取下玻璃管,用装有长针头的注射器沿玻璃管内壁慢慢地边注水边进入,并试着沿玻璃管内壁轻轻转动针头。当胶条松动时,用洗耳球小心地将胶条压出,装于试管中。(四)染色:临用时配制染色液:(10ml)联苯胺母液0.5mlH2O9.3ml3%H2O20.2ml将染液倒入盛有
7、凝胶条的试管中(没过胶条)。约10min后用自来水冲洗。(五)记录并计算:观察、记录酶谱,并计算各同工酶的相对迁移率。【要点提示】1.分离胶聚合时间应控制在30~60min,聚合过快使凝胶太脆易断裂,主要是AP或TEMED过量引起;聚合过慢甚至不聚合,可能是AP或TEMED用量不足或已失效。2.电泳时如果电泳槽盖上有冷凝水,则表示电压或电流过大,体系发热,可引起蛋白质变性、凝胶底部断裂等,应注意调整。特别是进入分离胶后应通过控制电压,调节电流不超过5mA/管。【思考题】1.说明不连续电泳中的浓缩效应主要是怎样引起的?2.为什么要在样品中加入少许溴酚蓝和一定浓度的蔗
8、糖溶液?3
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