实验6--可溶性蛋白质的测定

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1、实验六：可溶性蛋白质的测定（考马斯亮蓝G-250法）1．实验原理考马斯亮蓝G-250测定蛋白质含量属于染料结合法的一种。该染料在游离状态下呈红色，最大光吸收在488nm；当它与蛋白质结合后变为青色，蛋白质-色素络合物在595nm波长下有最大光吸收。其吸光值与蛋白质含量成正比，故可用于蛋白质的定量测定。2.适用范围与特点该法是1976年Bradford建立，试剂配制简单，操作简便快捷，反应非常灵敏，灵敏度比Lowry法（劳里法）还高4倍，可测定微克级蛋白质含量，测定蛋白质浓度范围为0~1000μg/mL，是一种常用的微量蛋白质快速测定方法。该法的不足是当蛋白质含量过高时

2、，线性关系较差，重复性也较差，同时染料很容易结合到比色皿上，给实验结果造成一定误差。3.实验材料、仪器与试剂材料：豆芽仪器：可见分光光度计，分析天平，容量瓶，移液管，具塞刻度试管，研钵，漏斗，铁架台，玻璃棒。试剂：考马斯亮蓝G-250，无水乙醇，磷酸，牛血清蛋白。试剂配制：考马斯亮蓝G-250试剂：称取0.1000g考马斯亮蓝G-250，溶于50mL95%乙醇中，加入85%磷酸100mL，用蒸馏水定容至1000mL。标准蛋白质溶液（100μg/mL）：称取0.0100g牛血清蛋白（BSA），溶于100mL蒸馏水中。4.实验步骤（1）样品处理：准确称取5g豆芽于研钵中，充

3、分研磨后转移至100mL容量瓶中，静置20min后过滤，弃去初滤液后备用。（2）标准曲线的绘制123456BSA（mL）00.20.40.60.81水（mL）10.80.60.40.20蛋白质含量（μg）020406080100取6支10mL具塞试管，按上表加入试剂，混合均匀后，向各管中加入5mL考马斯亮蓝G-250溶液，稀释至刻线10mL（则蛋白质浓度分别为0、2、4、6、8、10μg/mL），摇匀，放置5min后于595nm波长下比色。以蛋白质浓度为横坐标，以吸光度为纵坐标绘制标准曲线。（3）样品的测定另取3支10mL具塞试管，分别吸取样品溶液0.6mL，各加入5m

4、L考马斯亮蓝G-250溶液，稀释至刻线10mL，充分混合，放置5min后于595nm波长下比色，测定吸光度，并通过标准曲线查得蛋白质含量。5.结果计算蛋白质含量（%）=C×V2×V0m×V1×100式中：C——从标准曲线上查得的蛋白质浓度，g/mLV0——样品溶液的总体积，mLV1——测定时加样量，mLV2——测定时定容体积，mLm——样品的质量，g6.注意事项（1）考马斯亮蓝和皮肤中蛋白质通过范德华力结合，反应快速，并且稳定，无法用普通试剂洗掉。待一两周左右，皮屑细胞自然衰老脱落即可无碍。（2）考马斯亮蓝有G-250和R-250两种。蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合在

5、2min左右的时间内达到平衡，完成反应十分迅速，其结合物在室温下1h内保持稳定。考马斯亮蓝R-250与蛋白质反应虽然比较缓慢，但可以被洗脱下去，所以可用来对电泳条带染色。（3）不可使用石英比色皿（因不易洗去染色），可用玻璃比色皿，使用后立即用少量95%的乙醇荡洗，以洗去染色。（4）H+浓度是影响线性关系的主要因素，控制好显色液的H+浓度就能使被测液的吸光度与蛋白质浓度之间保持较好的线性关系，用HCl-NaCl缓冲液代替磷酸缓冲液也能改善标准曲线的线性关系。