Southern Blot操作流程

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1、SouthernBlot操作流程1、哺乳动物基因组DNA的提取(或用OMEGA试剂盒E.Z.N.A.TMTissueDNAKit)1、取约30mg样品,加入600ulSNET,再加入12ul(20.2mg/ml)的蛋白酶K,使蛋白酶K的终浓度为400ug/ml;2、55℃振荡过夜;3、加入0.6ulRNaseA,室温下孵育10min,后置于65℃10min;4、加入300ulTris饱和酚,288ul氯仿和12ul异戊醇,室温下振荡30min;5、17,000g离心5min,转移上层水相(600ul)至一新的离心管;6、加入等体积

2、(600ul)的异丙醇沉淀DNA,于4℃下13,250g离心15min;7、小心除去异丙醇,加入1ml70%的乙醇。离心5min后除去乙醇,室温下干燥15~20min;8、加入100ulTE,使核酸沉淀溶解。一、酶切1、拷贝数的计算哺乳动物基因组全长3.0×109个碱基对,按插入基因单拷贝计算如下:2、酶切体系基因组DNA10ug10*Buffer10ul酶(10U/ul)10ulTotal100ul3、混合后置于适宜酶切温度进行酶切反应;4、对酶切产物进行纯化,用30ulTE洗脱;1、制备1%浓度的琼脂糖凝胶(不加EB);2、将

3、纯化后的酶切产物敞开盖子于70℃放置15min,以除尽残留乙醇和消除酶切后产生的粘性末端;3、电泳:1v/cm。一、转膜1、碱变性:把胶条转移到含碱变性液的器皿中,摇床处理15min;重复一次;2、中和:倒出器皿中的碱变性液,加入中和液,摇床处理15min;重复一次;3、倒出中和液,加入20×SSC,摇床处理15min;4、转膜:1)在一干净的容器中放入一包吸水纸,倒入20×SSC,浸湿;2)放上一张与胶条大小相当的sigma3M滤纸,倒上一层20×SSC,防止产生气泡;3)将预先剪裁好的尼龙膜放入ddH2O中充分浸润2分钟;4)

4、小心把胶条铺在滤纸上面,用玻璃棒擀平,赶走气泡;5)往胶上倒上一层20×SSC,将尼龙膜铺在胶条上,再向上倒上一层20×SSC;6)再放上一张与胶条大小相当的sigma3M滤纸;7)用保鲜膜把胶条四周封上,在上面压上一包吸水纸,再用一个约250mg的物体压在吸水纸上面;8)转膜过夜;5、固定将膜放在用10×SSC浸湿的滤纸上面,使含DNA面朝上,放入紫外交联仪中,以1.5J,254n,2.5min的程序将DNA固定在尼龙膜上。二、杂交1、标记探针:可用随机引物法或PCR方法标记探针;2、将尼龙膜有DNA的一面朝内,卷成筒状放入杂交

5、管中,加入10ml经预热至50℃的DIGEasyHyb,于50℃预杂交30min;3、取10ul经标记的探针,热水浴5min变性,然后迅速放入冰水混合物中;4、将变性后的探针加入4ml预热的DIGEasyHyb中,混匀,并防止气泡的产生(气泡会产生背景);1、倒出预杂交液,加入含探针的杂交液,杂交4h或过夜。2、杂交温度的计算Tm=49.82+0.41(%G+C)-(600/I)[I=lengthofhybridinbasepairs]Topt=Tm-20to25℃一、洗膜1、室温下用W1洗液洗5min,重复一次;2、68℃下用W

6、2洗液洗15min,重复一次;3、将膜用WashingBuffer浸润5min;4、25~50℃下,用100mlBlockingSolution孵育30min,保持摇动;5、25~50℃下,用20mlAntibodySolution孵育30min,保持摇动;6、用100mlWashingBuffer洗15min,重复一次;7、用20mlDetectionBuffer平衡5min;8、将膜放入杂交袋中,使含DNA面朝上,滴加1mlCSPDready-to-use,将杂交袋合上,并赶走气泡,于15~25℃孵育5min;9、挤出多余的液

7、体,将潮湿的膜置于37℃孵育10min,以增强发光反应。二、显影直接用成像系统成像。DNA提取的溶液配制1.Tris-HCl(1mol/L;PH8.0)用800ml蒸馏水溶解12.1gTris碱,加浓HCl(约42ml)调PH至8.0,应使溶液冷却至室温后,方可最后调定PH值,加水定容至1L。高压灭菌。***如果溶液出现黄色,应予以丢弃,并使用质量更好的Tris。2.EDTA(0.5mol/L;PH8.0)186.1gEDTA·Na·2H2O加入800ml水中,用NaOH调节PH至8.0(约需20gNaOH),定容至1L,高压灭菌

8、。***EDTA·Na需在PH接近8.0时才会溶解。3.NaCl(5mol/L)292gNaCl加入800ml水中,定容至1L,高压灭菌。4.SDS(20%,m/v)十二烷基磺酸钠200gSDS加入900ml水中,加热到68℃有助于溶解,定容至1L

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