His标签融合蛋白纯化步骤

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1、His标签融合蛋白纯化步骤(Ni-NTA琼脂糖凝胶亲和层析纯化法)1.缓冲液配制LysisBuffer1(undernativecondition)0.5mMTris.HCl0.5MNaCl5%(w/v)glycerol10mMImidazol100mg(1mg/ml)lysozyme(Purificationof6xHis-taggedproteinsfromE.coli)1%NonidetP40(NP40=IgepalCA-630)0.25%Tween20(orTriton100)0.02%NaN3(Optional)2tablets

2、ofproteaseinhibitorcocktail(EDTAfree,Recommended)200µg(2µg/ml)RNaseA(Optional)1mg(10µg/ml)DNase1(Optional)50mMNaF(Optional)1mMNa3VO4(Optional)+ddH2Oto100ml,AdjustpHto8.0usingNaOH此lysisbuffer适用于从E.coli、哺乳动物细胞和昆虫细胞中纯化带His标签的蛋白质。仅在用于裂解E.coli细菌时,加入溶菌酶。Na3VO4是磷酸酶抑制剂,保护磷酸化的蛋白不被磷

3、酸酶还原。NaF是酯酶抑制剂,保护脂蛋白不被酯酶降解。注意:当使用镍琼脂糖凝胶纯化带His标签的蛋白时,缓冲液中不能加EDTA,因EDTA能使镍从螯合物上脱离,从而使分离介质失去效果。LysisBuffer2(underdenaturecondition)50mMTris-Cl8MUrea(or6MGu-HCl)10mMImidazole0.05%Tween20AdjustpHto8.0usingNaOHDialysis/TevcleavageBuffer50mMTris-Cl,pH8.0100mMNaCl(dependsonsolub

4、ilityofprotein)2.5%glycerol0.5mMEDTA0.5mMDTTorTCEP1/3缓冲液A:50mMTris.HCl0.5MNaCl5%glycerol0.05%Tween20用高浓度HCl调节pH值至8.0。缓冲液B(洗脱缓冲液):50mMTris-Cl0.5MNaCl5%glycerol0.05%Tween20500mM咪唑用高浓度HCl调节pH值至8.0。缓冲液C(咪唑梯度洗脱液):用缓冲液A和缓冲液B按不同比例配制,配制比例如下(100ml总体积):咪唑浓度缓冲液A(ml)缓冲液B(ml)0mM1000

5、10mM98220mM96450mM901060mM8812100mM8020150mM7030200mM6040250mM5050400mM2080各种溶液配制完毕后,最好进行脱气处理,0.45μm滤膜过滤备用。2.样品预处理:按每克湿重菌体/4~5mlLysisBuffer的比例充分悬浮离心收集的菌体,置-80ºC冰箱过夜;在4ºC融解菌体,vortex悬浮细菌,400w功率下,每个循环超声5s,冷却5s,每次10min,共循环2次破碎菌体;4℃、12000rpm离心30min,收集上清液或者用0.45μm滤膜过滤,并用低浓度NaOH调

6、节pH至8.0待纯化。2/33.操作步骤介质平衡与亲和TM取1mlNi-NTA琼脂糖凝胶(金益肽NTA货号:JYT-M0007),置入15ml离心管中,2000rpm离心2min,移去上清液;加入5mlLysisBuffer,混匀,低速离心,去上清。加入4-5ml细胞(细菌)裂解液,置于混匀转盘,4ºC低速旋转1小时。TM(每个品牌的NI柱载量都不同,金益肽NI-NTA琼脂糖凝胶载量>40mg/ml,请根据目标蛋白的浓度、分子量大小、及体积来选取适量的Ni-NTA琼脂糖凝胶)装柱1)将层析柱固定在铁架台或层析架上,封闭层析柱下端出口,向

7、柱内充入纯水,排开层析柱内空气,先将垫片完全浸没于水面下方,在保持水平的状态下,小心推向底部,避免垫片下方滞留气泡。2)打开层析柱下端出口,排出柱中纯水;在液面低至距垫片1~1.5cm高度时封闭下端出口,用移液管吸取已与样品亲和的介质,将介质加入到层析柱中;在4ºC静置10min,让介质自然沉降。3)从上端管口将另一垫片缓慢推至介质沉降平面,使介质表面保持水平状态,注意避免垫片与介质接触面滞留气泡(如对实验要求并非十分严格,为提高流速,可不覆盖上垫片)。4)在使用一段时间后,如果层析柱流速减慢,可先用小镊子沿边缘将垫片推翻,夹出垫片,倒出介

8、质,清洗或更换新的垫片后,按2)、3)所述步骤重新装柱;或不更换垫片,用细棒搅拌介质,使其疏松,再装入上端垫片。洗柱:用5~10倍介质体积含10mM咪唑缓冲液C洗去层析柱中未结

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