大鼠Allen’s脊髓损伤模型的建立及评价

大鼠Allen’s脊髓损伤模型的建立及评价

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1、广西医科大学学报JOURNALOFGUANGXIMEDICALUNIVERSITY2011Apr;28(2)IIRSI·215·大鼠Allen’S脊髓损伤模型的建立及评价熊春翔宗少晖△曾高峰韦波赵玉玺(广西医科大学第一附属医院脊柱骨病外科南宁530021)摘要目的:建立并评价大鼠Allen’S脊髓损伤模型,为进一步研究脊髓损伤机制提供实验动物参考。方法:SD大鼠6O只,体重23O~270g,随机分为空白组(20只),手术组(20只),功能评价组(20只)。空白组不做任何处理,手术组和功能评价组都采用Allen,S法致伤。功能评价组作手术前

2、后的BBB功能评分和斜板试验,空白组与手术组作病理切片HE染色。结果:功能评价组术前斜板度数和BBB评分均高于术后(P

3、脊髓损伤的研究进展缓慢,其治疗效果不佳,位T。为中心,作长约4cm的纵行皮肤切口,依次切开各层主要因为脊髓损伤的发病机制复杂,缺少一个较理想的脊髓皮下组织,暴露出T。棘突,用微型咬骨钳咬除T。棘突及椎损伤模型用于脊髓损伤的研究。Allen_1在1911年创造了板,将,r】。段脊髓暴露(见图1)。后采用自制改良的Allen’S垂直打击脊髓用于建立脊髓损伤模型的方法。由于此法很装置(见图2),先将一打击面直径约3.5mm圆形薄塑料垫接近于人类SCI发生过程,临床相关性好,适用于SCI的研片置于T。脊髓表面,再用重10g铁锤从30mm高处自由落

4、究。但此模型具有打击力度不均和无法进行定量分析等缺下,撞击硬膜囊,造成T。段脊髓的冲击伤,撞击后以消毒温点。因此,本实验拟建立改良型的大鼠Alien’S脊髓损伤模盐水清洗损伤脊髓,之后依次缝合肌肉、筋膜、皮肤。脊髓损型,通过改良Rivlin斜板试验【2和脊髓运动功能BBB(Basso,伤模型造模成功的标志:在Allen装置撞击脊髓时,大鼠发生BeattieandBresnahan)评分法_3及病理切片HE染色,观察身体抖动,其双下肢迅速回缩及弹动,尾巴发生翘起并迅速急性损伤后大鼠脊髓功能的变化情况,为进一步研究SCI机倒下,其打击局部脊髓

5、表面迅速瘀血。术后应用抗生素,连制提供实验动物参考。续3d肌注青霉素(广西医科大学第一附属医院药剂科提供)3万u/次,2次/d。急性脊髓损伤后,大鼠会出现暂时性自1材料与方法主排尿功能丧失,可采用下腹部按压膀胱法,进行人工排尿,1.1实验动物:清洁级健康SD大鼠(雌雄不限)60只,体重3次/d,直至大鼠自主排尿功能恢复。230~270g,购于广西医科大学动物实验中心(SCXKGUI2009~OOO2),随机分为空白组(20只):用于实验对照;手术组(20只):用于观察脊髓组织病理变化;功能评价组(20只):用于行为学评分。均饲养于广西医科

6、大学标准动物实验室,室温(23±2)oC,12h间隔照明,定期消毒和通风,自由进食消毒颗粒饲料和高压消毒后的自来水(广西医科大学动物实验中心提供)。1.2大鼠AllenS脊髓损伤模型的建立手术方案:取手术组和功能评价组大鼠,采用水合氯醛0.33mL/100g腹腔注射麻醉,麻醉后,大鼠以俯卧位固定,图1T。段脊髓暴露*基金项目:本课题受广西医科大学博士启动基金资助(No.308010)、广西教育厅科研基金资助(No.桂教200710LX063)及广西医科大学博士后科研流动站资助△通信作者1广西医科大学研究生学院2广西医科大学公共卫生学院收稿

7、日期:2010—11-04熊春翔,等.大鼠AllenS脊髓损伤模型的建立及评价进方案:将大鼠四肢头部固定,能够减少致伤装置系统具有价药物疗效及临床脊髓损伤保护等研究提供重要的动物模的变异因素。此外,设计的打击仪将重物、垫片等物件均附型。于一个底座上,使动物的固定与调节操作更方便、灵活,从而参考文献:使该模型的稳定性和可控性都得到提高。本实验中对大鼠SCI后运动功能的观察通过运动功能[1]AllenAR.Surgeryofexperimentallesionofspinalcord评分及病理组织切片,从主观、客观两方面评价致伤脊髓对equi

8、valenttocrushi~uryoffracturedislocaionofspinal小鼠运动功能的影响。大鼠运动功能评分采用国际通用的co1um[J].JAMA,1911,57(4):

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