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时间:2018-08-03
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1、精选公文范文管理资料对Allen’s打击法制备动物脊髓损伤模型的临床护理脊髓损伤(spinalcordinjury,SCI)所造成的截瘫等严重功能障碍给患者本人、社会和家庭带来了巨大的经济损失与负担,也是临床上常见的治疗比较棘手的骨科创伤疾患。临床相似性、可调控性和可重复性常作为理想的SCI动物模型的标准[1].建立标准的动物SCI模型成为了研究脊髓损伤的前提基础,因Allen’s[2]打击法模型制作过程与临床发病过程相似度较高,所以被广泛应用于挫伤型SCI的动物实验[3].而制备后使其长时间的存活,保持模型的稳定性,提高模型样本量成为实验顺利开
2、展的前提基础。为了使SCI模型具有较好的稳定性,本实验应用Allen’s打击法制备大鼠动物SCI[键入文字][键入文字][键入文字]精选公文范文管理资料模型,两组给予不同的术后护理,观察两组大鼠死亡率和并发症,分析有效的护理对造模后大鼠的作用,并分析大鼠的死亡原因,为后期治疗SCI提供前提条件及实验数据,现报道如下。1材料与方法。1.1实验动物与分组。1.1.1实验动物清洁级成年SD大鼠40只,雌雄不限,体重(200±20)g,由华中科技大学同济医学院实验动物中心提供[生产许可证:SCXK(鄂)2010-0007].1.1.2实验分组与SCI模型
3、的建立40只大鼠,随机分成两组(A组普通饲养组和B组饲养护理组),每组20只,适应性喂养1周后准备造模。用Allen’s法(10g重物5cm高度垂直打击)建立挫伤型SCI大鼠模型。以T10棘突为中心切开背部正中T9~11棘突部皮肤,刀柄分离棘突两侧肌肉,暴露棘突及椎弓板,咬骨钳咬除棘突及椎板,暴露脊髓,用Allen’s打击器对准T10节段脊髓垂直打击,打击高度5cm,重量10g,直径2mm,打击成功可见大鼠尾巴出现痉挛性摆动,双下肢躯体回缩样扑动,呈迟缓性瘫痪。1.2[键入文字][键入文字][键入文字]精选公文范文管理资料饲养及术后护理方法。1.
4、2.1A组本组内大鼠术后每只动物肌肉注射青霉素16万U/d,连续1周。每日定量供应充足饲料和水,在安静、通风、清洁环境下分笼饲养,辅助排尿,每日一次更换鼠笼内垫料,保持鼠笼内干燥、清洁。1.2.2B组本组内大鼠除以上普通饲养外并加强以下护理:(1)红外线照射:术后创口红外线照射治疗,2次/d,1h/次;(2)辅助排尿:大鼠每日辅助排尿至少2次,早晚各一次,排尿时,左手撑起大鼠腹部,右手触摸找到充盈的膀胱,按出膀胱底部,自上而下轻柔挤压,逼迫尿液排出,注意轻柔,避免过力导致膀胱破裂,尿道阻塞者性膀胱穿刺(10ml注射器针头穿刺膀胱抽出潴留尿液);(
5、3)辅助运动:大鼠每日辅助运动1次,每次半小时。辅助运动时,先予大鼠腹部按摩2~3min,后将大鼠置于斜坡栏上,一手将大鼠尾巴拎高过大鼠头部,促使其爬坡,增强运动;(4)防止褥疮:挤压膀胱排尿后,及时清理会阴或包皮,使其保持干燥,每日检查2[键入文字][键入文字][键入文字]精选公文范文管理资料次大鼠,若肢体有被尿液浸湿及时用温肥皂水清洗,并用电吹风吹干。1.3观察指标。1.3.1BBB功能评分在模型制备手术前1d及术后1d、术后1周、2周、4周行BBB评分[4]用以评价术后运动功能。采用双人双盲法。取2个测评均值作为每次记录值。1.3.2模型情
6、况(1)模型存在的并发症情况:模型制备后开始至术后4周期间,记录大鼠存在的并发症情况;(2)模型死亡时间:模型制备后开始记录各组内死亡大鼠的死亡时间,至术后4周为止。1.4统计学处理。采用SPSS17.0统计软件对所得数据进行统计处理,计量资料用均数±标准差(x-±s)表示,若不满足正态性及方差齐性采用秩和检验;计数资料比较采用字2检验。P2结果。2.1模型发生并发症情况。造模后,大鼠均为双下肢瘫痪,无活动,损伤平面以下肌张力降低,对针刺无明显反应;术后1[键入文字][键入文字][键入文字]精选公文范文管理资料周,大鼠活动少,进食饮水减少,尿潴留
7、现象普遍存在,伴有血尿、脓尿、脓血尿及腹部胀气,大便困难,少数出现尿失禁,存在肢体自噬、伤口感染、褥疮、慢性消耗性死亡等并发症,也有不明原因的突然死亡,详见表1.2.2BBB评分评价。造模4周后共获得18只模型大鼠的完整BBB评分数据,A组与B组大鼠BBB评分比较,差异无统计学意义(P>0.05)。造模后1、2、4周各组大鼠的BBB评分组内比较差异均无统计学意义(P>0.05),模型制备前1d分别与模型制备后1d、1周、2周、4周各组大鼠的BBB评分组内比较差异均有统计学意义(P2.3两组大鼠死亡时间比较。大鼠SCI模型制备后,A组大鼠共死亡16
8、只,存活4只;B组大鼠共死亡6只,存活14只;A组大鼠总死亡数较B组多,且A组死亡时间在在一周左右出现密集区,B组死亡时间无明显密集区。
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