实验五 小鼠初级精母细胞染色体畸变试验 2009.12.01

实验五 小鼠初级精母细胞染色体畸变试验 2009.12.01

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1、实验五小鼠初级精母细胞染色体畸变试验MammalianSpermatocyteChromosomeAberrationTest目的本试验是一项检测生殖细胞染色体畸变效应试验,利用细胞遗传学方法,检测整体哺乳动物初级精母细胞染色体畸变,以评价受试样品引起生殖细胞可遗传突变的可能性。学习小鼠初级精母细胞染色体畸变试验方法的基本操作步骤。原理不同发育阶段的雄性生殖细胞对化学物质的敏感性不同,初级精母细胞对化学诱变剂较敏感。多数情况下,化学诱变剂诱发染色体畸变必须经过DNA复制期。哺乳动物精子发生过程中,DNA合成是在初级精母细胞细线期以前的各阶段细胞中进行,以后孵育的细胞不再进行DNA

2、合成,故受试物需在前细线期给予。于小鼠第一次接触受试物后的第12~14天采样制片,可观察到前细线期接触引起的精母细胞染色体畸变效应。仪器和器械生物显微镜、离心机、解剖剪、眼科镊子、注射器、灌胃针头、小平皿、离心管、吸管、滴管、试管架、载玻片、玻璃染色缸、擦镜纸等。试剂姬姆萨(Giemsa)染液Giemsa染料3.8g甲醇375ml甘油125ml配制:将Giemsa染料和少量甲醇于乳钵里仔细研磨,再加入甲醇至375ml,待完全溶解后,再加入125ml甘油,混合均匀。置37℃恒温箱中保温48h。保温期间振摇数次,促使染料的充分溶解。取出过滤,两周后使用。试剂0.04%秋水仙素:置于棕

3、色瓶中,冰箱保存;低渗液:1%柠檬酸三钠溶液;1%枸橼酸三钠溶液;0.4%KCL,300ml60%冰乙酸:临用时现配,100ml固定液:甲醇与冰醋酸以3:1混合,临用时现配,400ml;试剂磷酸盐缓冲液(pH6.8)12水磷酸氢二钠(Na2HPO4)11.81g(磷酸氢二钠:4.74g)磷酸二氢钾(KH2PO4)4.50g加蒸馏水至1000mlGiemsa应用液:取1份Giemsa染液与9份1/15mol/L磷酸盐缓冲液混合而成,临用时配制。试验设计实验动物7~12周龄健康雄性小鼠,每组保证至少5只存活剂量分组阴性对照组溶剂阳性对照组丝裂霉素C1.5~2mg/kg腹腔注射一次;或

4、环磷酰胺40mg/kg,腹腔注射,1次/d,连续5天。试验设计-剂量组高剂量根据急性LD50,选用使动物轻微中毒,体重略有下降,不引起动物死亡的剂量按等比级数2向下设置中、低剂量组接触途经与实际接触途经一致或接近,可一次接触,也可每天接触一次,连续5天的方法。取样时间各组均于第一次接触后第12~14天将动物处死采样。操作步骤1、注射秋水仙碱动物处死前6h腹腔注射秋水仙碱4mg/kg(0.04%,0.1ml/10g)2、动物处死颈椎脱臼处死小鼠,取两侧睾丸,去净周围组织和脂肪,放入盛有适量低渗液的小平皿中,洗去毛和血污,转入另一小平皿中。3、低渗用眼科镊撕开睾丸被膜,轻轻分离曲细精

5、管,加低渗液10mL,用滴管吹打混悬曲细精管,室温下低渗20~40min(低渗时间依室温条件而定)。4、固定仔细吸净低渗液,加固定液10mL,固定20min。必要时可存放在冰箱中过夜,但软化前应将固定液吸掉,再加入新鲜固定液,固定10min。5、软化吸净固定液,加60%冰醋酸2mL,滴管吹打至不透光,立即加入4mL固定液,用滴管打匀,移入离心管,以1000r/min离心10min。6、制片弃去大部分上清液,留下约0.5~1mL,充分打匀制成细胞悬液。将细胞悬液均匀地滴于冰水玻片上,轻吹细胞悬液扩散平铺于玻片上。每个睾丸制片2~3张。空气干燥或微热烘干。预冷的玻片滴片7、染色将制备

6、好的标本片放入Giemsa应用液中染色20~30min。立即用蒸馏水或磷酸盐缓冲液冲洗。晾干。8、读片在低倍镜下按一定顺序寻找背景清晰、分散良好、染色体收缩适中的中期分裂相细胞,再在油镜下选取邻近无游离染色体或中期相的细胞进行观察。9.观察每只动物分析100个中期分裂相细胞。(1)裂隙、断片、缺失、微小体、环状染色体、整倍体和非整倍体改变等。(2)相互易位涉及非同源染色体间末端断片的交换,需要两次断裂和修复。(3)X-Y和常染色体的单价体统计学方法:受试样品组与对照组的断片、易位、畸变细胞率、常染色体单价体、性染色体单价体等分别按X2检验或Kastenbaum和Bowman所述方

7、法进行统计分析。阳性:受试样品组染色体畸变率与阴性对照组相比,统计学意义上有显著性差异,并有明显的剂量—反应关系或在一个受试样品组出现染色体细胞畸变数明显增高。若统计学上差异有显著性,但无剂量—反应关系,则须进行重复试验,结果能重复者可确定为阳性。结果评价小白鼠的染色体分裂相(2n=40)小白鼠的染色体

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