槲皮素对胃癌sgc细胞生长及小凹蛋白-1表达的影响

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1、目录中文摘要⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯1英文摘要⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．3符号说明⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．6前言⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯7日U舌⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯7材料与方法⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯

2、⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．10结果⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．27讨论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．32结论⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．38参：考文献⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯39综垂盎⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．43霉定谢⋯⋯⋯⋯⋯

3、⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯．50攻读学位期间发表的学术论文⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯51原创性声明⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯⋯。52槲皮素对胃癌SGC细胞生长及小凹蛋白．1表达的影响藏蒸嚣蜘学、、溉YZso；,0-。》导师：商战平教授、、方法1．为确定槲皮素是否对人胃癌细胞株SGC-7901细胞生长具有调节作用分别将5、10、20、40、80umol／1的五个浓度的槲皮素与SGC一7901细胞共同培养，分别

4、培养48h，72h后检测槲皮素对人胃癌细胞株SGC．7901细胞增殖活性的影响。2．为确定槲皮素是否对人胃癌细胞SGC一7901细胞形态产生影响在经不同浓度的槲皮素处理胃癌细胞后，在倒置显微镜下观察各组细胞的形态学改变。3．为确定槲皮素是否对人胃癌细胞株SGC．7901细胞凋亡产生影响将不同浓度的槲皮素(20、40、809mol／L)预处理SGC。7901细胞后，经AnnexinV／PI染色，采用流式细胞仪检测各组细胞凋亡率。4．为确定槲皮素对cav．1蛋白表达的影响采用不同处理浓度的槲皮素(20、40、80}tmol／L)

5、预处理SGC．7901细胞后，westernblotting法检测细胞中cav一1表达的变化。结果1．槲皮素可以抑制胃癌SGC．7901细胞增殖：本实验应用MTT法观察分析槲皮素对胃癌SGC7901细胞存活率的影响，分别以5、10、20、40、801amol／L三个浓度的TG与RAW264．7细胞共同培养，于24、48h、72h三个时间点测定A值并计算胃癌细胞的生长抑制率，结果显示，在各时间段内20、40、80umol／1Que对胃癌细胞SGC．7901的抑制作用与对照组相比差异显著(P

6、素可以影响胃癌细胞SGC．7901形态：倒置显微镜下观察对照组正常的胃癌SGC．7901细胞数量多，形态呈立方形，细胞间距大，细胞呈单层贴壁式生长，生1长舒展，脱落几乎不可见；经含槲皮素培养基处理后，细胞的体积变小、变圆，皱缩、脱落，可见细胞悬浮于培养液中，核颜色加深，折光性增强，细胞膜完整但出现发泡现象，说明此时细胞已出现凋亡的形态学变化。与对照组相比，加入不同浓度的槲皮素处理后，细胞形态随浓度的增加凋亡程度越发严重，说明细胞的凋亡的形态学改变和槲皮素浓度也呈现剂量依赖。3．槲皮素可以促进胃癌细胞SGC．7901凋亡：经槲

7、皮素预处理细胞，采用AnnexinV．FITC／PI双标记染色，在流式细胞仪下检测各组胃癌SGC．7901细胞的凋亡率。结果显示，对照组总凋亡率为(5．624-1．65)％；经过Que(10、20、40和80umol／1)后，总凋亡率分别为(11．39±1．13)％、(32．69±1．40)％、(66．72±1．96)％、(72．39±1．30)％，均较对照组明显增加(P

8、westemblot检测各组细胞中caveolin．1表达的变化。结果显示，实验组各组细胞中caveolin．1蛋白表达较对照组明显降低，10、20、40、80umol／1Que处理组的相对蛋白含量较对照组分别降低了46．2％、62．7％、95．O％和98．7％(P