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时间:2019-02-28
《超氧化物歧化酶在hcy诱导thp―1单核细胞源性巨噬细胞中抗氧化作用》由会员上传分享,免费在线阅读,更多相关内容在工程资料-天天文库。
1、超氧化物歧化酶在Hey诱导THP-1单核细胞源性巨噬细胞中抗氧化作用摘要:目的探讨超氧化物歧化酶(SOD)在Hey诱导的THP-1单核细胞源性巨噬细胞氧化应激中的作用。方法THP-1单核细胞,加入佛波酯(PMA)诱导分化为巨噬细胞,然后加入100nmol•L-1的Hey和100卩mol•LTHcy+叶酸+VB12,并设置对照组(OuMHey),孵育48h后收集细胞。采用Fe3+还原比色法检测总抗氧化能力(T-AOC)、黄嚓吟氧化酶法测定超氧化物歧化酶(SOD)活性及硫代巴比妥酸比色法测定MDA含量。结
2、果lOOumol•L-lHey组与对照组比较,T-AOC、SOD水平明显降低,MDA的含量明显升高;与loopmol・LTHcy+叶酸+VB12组比较,T-AOC、SOD水平升高,MDA的含量降低。结论Hey可诱发THP-1单核源性巨噬细胞发生氧化应激,SOD的活性下降且与MDA呈负相关,表明SOD在Hey诱导的THP-1单核细胞源性巨噬细胞中的抗氧化作用下降。关键词:超氧化物歧化酶;同型半胱氨酸;THP-1单核细胞源性巨噬细胞;氧化应激;动脉粥样硬化动脉粥样硬化(AS)是一种多因素诱导的慢性炎症性疾
3、病,在其众多的致病因素中,氧化所致的损伤与AS的发生发展密切相关。同型半胱氨酸(Hey)已被大量临床及循证医学证实是AS的一个重要的独立危险因子,Hey致AS的确切机制仍然有待阐明,目前多数学者认为与Hey致氧化应激毒性损伤有关。正常情况下,随着氧化代谢效率的提高,体内的抗氧化能力也不断增强,人体已经形成较为完善的抗氧化体系,即机体和细胞内活性氧的生成和清除处于一种动态平衡,当在某些因素的作用下这种平衡被打破,就形成了氧化应激。在机体抗氧化机制的研究中,超氧化物歧化酶(SOD)作用的发现具有重要意义。
4、SOD催化超氧阴离子自由基的歧化反应,作为氧自由基清除的第一反应过程,在阻止自由基和脂质过氧化对机体的损害方面起关键性作用。因此,本研究通过体外培养THP-1单核细胞源性巨噬细胞,探讨SOD在Hey诱导的THP-1单核细胞源性巨噬细胞氧化损伤中的作用。1资料与方法1.1-般资料THP-1单核细胞株来源于四川大学华西医学院;RPMI-1640培养基为GIBCO公司产品;小牛血清,胎牛血清购于杭州四季青生物工程材料研究所;同型半胱氨酸(Hey)、叶酸、维生素E12、佛波酯(PMA)为Sigma公司产品;总
5、抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)、丙二醛(MDA)测定试剂盒购于南京建成生物工程研究所;BCA蛋白含量检测试剂盒购于南京凯基生物科技发展有限公司。1.2方法1.2.1单核细胞培养将复苏好的THP-1单核细胞接种于15%胎牛血清的RPMI1640培养液中,于37°C、5%CO2的培养箱中静置培养,传代。以4X106密度接种于25cmX25cm培养瓶,加入PMA使其终浓度为500umol-L-1(含7%胎牛血清)孵育48h,显微镜下观察细胞呈贴壁状态,证实THP-1细胞已诱导分化为巨噬细
6、胞。1.2.2实验分组当贴壁的THP-1巨噬细胞密度达到lX106/mL时分别加入100nmol•L-1的Hey和100Pmol-L-1Hey+叶酸+VB12,并设置对照组(OuMHey),孵育48h后检测氧化应激指标。1.2.3培养细胞的收集、破碎及蛋白浓度的测定用橡皮刮子刮下孵育后的THP-1巨噬细胞,1000rpm/min,离心10min弃上清,lmlPBS轻轻吹打,再次1000rpm/min,离心lOmin弃上清,重悬于0.5ml缓冲液中。功率300W,冰水浴,每3〜5s超声一次,间隔4次。上
7、述样本用凯基BCA蛋白含量检测试剂盒测定蛋白浓度,用于计算。1.2.4氧化应激指标测定总抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)及丙二醛(MDA)等指标均采用南京建成生物工程研究所提供的试剂盒进行测定。1.2.5统计学处理用Prism5.0统计软件进行统计学分析,结果以x±s表示,组间两两比较用Student-Newman-Keuls检验,两样本均数间比较采用Student?st检验,多样本均数间比较采用0ne~wayANOVA检验,p
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