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时间:2018-11-22
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1、紫苏与大黄注射液配伍后的稳定性考察论文彭尧,徐在品,高俊波,王清宇,赵伟,王定坤,邓小燕【摘要】目的室温条件下考察大黄注射液与紫苏注射液配伍的稳定性。方法制备大黄及紫苏注射液,根据《中华人民共和国药典》(2005年版)对其进行质量检查。应用紫外可见光分光光度计、酸度计、显微镜检查大黄及紫苏注射液配伍6h内的外观、吸收度值、pH值以及微粒的变化。结果配伍液外观、含量、pH值及微粒均无明显变化。结论大黄和紫苏注射液配伍后稳定性良好.freelPerillaeInjectionatroomtemperatur
2、e.MethodsAfterFoliumPerillaeinjectionandRhubarbinjectionacopeiaofChina2005”.Appearance,absorbabilityvalue,pHvalueandparticlesofmixtureoftheteter,pHmeterandmicroscope.ResultsNosignificantchangeixtureatroomtemperature.ConclusionRhubarbinjectionmixedPerilla
3、einjectionhasgoodstabilityandthetixedtouse.KeyPerillaeInjection;RhubarbInjection;patibility;Stability研究表明紫苏、大黄注射液具有防治动脉粥样硬化和抑制犬血管搭桥术后血管内膜增生的作用1~4,但两种注射液同时使用效果如何尚待研究。临床上为了给药方便,常把几种药物配伍使用,配伍后溶液是否发生理化反应是能否配伍的基础。若配伍不当会使药效降低或失去疗效,甚至产生毒副作用而危及生命。本研究将大黄和紫苏注射液进行配
4、伍,考察其稳定性,以期为进一步研究大黄紫苏提取液能否抑制血管搭桥术后血管内膜增生奠定基础。1仪器与材料1.1仪器TG-321型分析天平(上海优浦科学仪器有限公司),RE-52A旋转蒸发器(上海亚荣生化仪器厂),SZ-97自动三重纯水蒸馏器(上海亚荣生化仪器厂),FZ-102微型植物粉碎机(天津市泰斯特仪器有限公司),SHZ-Ⅲ型循环水真空泵(上海硕光电子科技有限公司),VC605超声波细胞破碎仪(美国SONICSMATERIALS公司),SHZ-Ⅲ型循环水真空泵(上海硕光电子科技有限公司),紫外可见光分
5、光光度计(上海分析仪器总厂),PB-20标准型pH计(德国赛多利股份公司),CX31光学显微镜(日本OLYMPUS公司)。1.2药品与试剂药用大黄和紫苏叶购于贵阳市药材市场,并经贵州大学中兽医教研室鉴定。无水乙醇、醋酸乙酯分析纯、石油醚分析纯(天津市致远化学试剂有限公司)。2方法与结果2.1紫苏、大黄注射液的制备紫苏与大黄注射液的制备参考相关文献5,6。所制备的紫苏注射液折合生药含量为0.4g/ml,大黄注射液折合生药含量为0.5g/ml。2.2注射液的质量检查根据《中国药典》(2005年版)规定,检测
6、上述注射液的鞣质、树脂、草酸盐含量,测定注射液的稳定性、刺激性、溶血性、凝集性和热源性等。指标均符合药典规定,大黄注射液LD50为1.213g/kg,紫苏注射液LD50为406.82mg/kg。2.3配伍液的考察2.3.1最大吸收波长的选择精确量取3次不同时间制备的紫苏注射液各30ml,分别加入同一时间制备的大黄注射液各20ml,摇匀得配伍液A1,A2,A3。将溶液A1,A2,A3分别以大黄注射液为空白对照,在340~600nm波长范围内进行扫描。以配伍液的吸收度为纵坐标,波长为横坐标绘制吸收曲线,分别
7、得到紫苏注射液在大黄注射液中的吸收光谱。见图1。由图1可知配伍液在410nm波长处显示最大吸收。2.3.2线性关系考察精密量取A1溶液0.83,1.67,3.33,5.00,6.67,8.33ml于10ml容量瓶中,用大黄注射液稀释至刻度,摇匀,以大黄注射液为空白,在410nm波长处测定其吸收度,得回归方程A1=0.5018C1+0.1462(r1=0.9635);同法精密量取A2溶液测定得回归方程A2=0.5395C2+0.1278(r2=0.9967);同法精密量取A3溶液测定得回归方程A3=0.5
8、302C3+0.1312(r3=0.9959)。结果表明3种配伍液中紫苏注射液的检测浓度在0.05~0.5ml/ml范围内呈现良好的线性关系。3组配伍液分别测得的吸收度值见表1。A1-A1配伍液A2-A2配伍液A3-A3配伍液图13次不同时间制备的紫苏注射液在大黄注射液中的吸收光谱表13次提取紫苏注射液的大黄溶液的不同浓度下的吸收度2.3.3稳定性实验分别将A1,A2,A3溶液室温放置6h,整点取样在410nm波长处测定其吸收度,并分别计算
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