猴局部脑缺血模型的构建

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1、猴局部脑缺血模型的构建：探讨猴局部脑缺血模型的构建，为脑缺血的相关研究提供合适的动物模型。方法：选择12只健康的猕猴，采用介入造影法，经动脉插管，将微导管插入大脑中动脉（middle　cerebral　artery，MCA）M1分支，使用自体白色血栓堵塞血管，阻断血流。结果：栓塞后数字减影血管造影（DSA）影像提示大脑中动脉分支显示不清，1h内CT灌注成像（CT　Perfusion　imaging，CTPI）和扩散加权成像（diffusion-aging，Dedical　Systems），MRI后处理Sy

2、nogo工作站等。　　1.2方法　　1.2.1麻醉及术前准备　术前24h禁食，8h禁水。麻醉前，平静状态下记录猴子呼吸频率。复合麻醉剂（氯胺酮10mg／kg+咪达唑仑1mg／kg+东莨菪碱0.02mg／kg）肌肉注射，麻醉成功后，行手术前CT平扫，排除颅内病变，有病变者不予手术。　　开通静脉通道：动物仰卧位固定于手术台上，左小腿外侧静脉区常规备皮、消毒，静脉穿刺成功后接三通管，以备术中静脉给药取血之用。　　1.2.2制作血栓　动物麻醉后取其静脉血2ml，肝素抗凝，高速离心后取上层血清加入血浆凝固酶，注入直

3、径1mm的硬膜外麻醉管（河南新乡市驼人医疗器械公司），制成自体血栓备用。　　1.2.3大脑中动脉部分栓塞　动物麻醉后鼻饲给氧，在常规心电监护仪系统下进行心电、呼吸和血压监护。微量泵静脉注射异丙酚等以维持麻醉状态。皮肤切开后行Seldinger技术将1.4F微导管插管至大脑中动脉起始部（M1段），行大脑中动脉正侧位造影，总量1.8ml，速度0.8ml／s，了解右侧大脑中动脉血流状态。自微导管注入制备好的血栓，再次行大脑中动脉正侧位造影确认栓塞成功。插管技术和方法与周智鹏等报道相同。　　1.2.4CTPI扫描

4、　分别于栓塞后1h行CTPI扫描，扫描条件120KV，80mA，对比剂总量10ml，速度0.3ml／s。将扫描得到的数据导人GE　ATT）等数据。　　1.2.5MRI和DRI和DRI　T2CAO造模后，血栓牢固，梗死灶形成，12只猕猴均呈现不同程度右侧或左侧肢体瘫痪的大脑局灶性脑缺血表现。　　2.1DSA血管造影前后　　12例栓塞前MCA及其M1分支显示清楚、走行正常，栓塞后可见MCA分支M1或其他分支显示不清（图1）。　　2.2CTPI扫描：探讨猴局部脑缺血模型的构建，为脑缺血的相关研究提供合适的动物模

5、型。方法：选择12只健康的猕猴，采用介入造影法，经动脉插管，将微导管插入大脑中动脉（middle　cerebral　artery，MCA）M1分支，使用自体白色血栓堵塞血管，阻断血流。结果：栓塞后数字减影血管造影（DSA）影像提示大脑中动脉分支显示不清，1h内CT灌注成像（CT　Perfusion　imaging，CTPI）和扩散加权成像（diffusion-aging，Dedical　Systems），MRI后处理Synogo工作站等。　　1.2方法　　1.2.1麻醉及术前准备　术前24h禁食，8h禁水

6、。麻醉前，平静状态下记录猴子呼吸频率。复合麻醉剂（氯胺酮10mg／kg+咪达唑仑1mg／kg+东莨菪碱0.02mg／kg）肌肉注射，麻醉成功后，行手术前CT平扫，排除颅内病变，有病变者不予手术。　　开通静脉通道：动物仰卧位固定于手术台上，左小腿外侧静脉区常规备皮、消毒，静脉穿刺成功后接三通管，以备术中静脉给药取血之用。　　1.2.2制作血栓　动物麻醉后取其静脉血2ml，肝素抗凝，高速离心后取上层血清加入血浆凝固酶，注入直径1mm的硬膜外麻醉管（河南新乡市驼人医疗器械公司），制成自体血栓备用。　　1.2.3

7、大脑中动脉部分栓塞　动物麻醉后鼻饲给氧，在常规心电监护仪系统下进行心电、呼吸和血压监护。微量泵静脉注射异丙酚等以维持麻醉状态。皮肤切开后行Seldinger技术将1.4F微导管插管至大脑中动脉起始部（M1段），行大脑中动脉正侧位造影，总量1.8ml，速度0.8ml／s，了解右侧大脑中动脉血流状态。自微导管注入制备好的血栓，再次行大脑中动脉正侧位造影确认栓塞成功。插管技术和方法与周智鹏等报道相同。　　1.2.4CTPI扫描　分别于栓塞后1h行CTPI扫描，扫描条件120KV，80mA，对比剂总量10ml，速

8、度0.3ml／s。将扫描得到的数据导人GE　ATT）等数据。　　1.2.5MRI和DRI和DRI　T2CAO造模后，血栓牢固，梗死灶形成，12只猕猴均呈现不同程度右侧或左侧肢体瘫痪的大脑局灶性脑缺血表现。　　2.1DSA血管造影前后　　12例栓塞前MCA及其M1分支显示清楚、走行正常，栓塞后可见MCA分支M1或其他分支显示不清（图1）。　　2.2CTPI扫描栓塞术后1h内行CTPI扫描，12例均显示急性脑缺血区CBF、CBV较