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时间:2018-10-10
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1、可溶性TATPTD:周国钰,胡学强,胡骏,陆正齐,楼之茵,朱灿胜,熊洁萍【摘要】【目的】构建含蛋白转导域(proteintransductiondomain,PTD)与脑红蛋白(neuroglobin,Ngb)融合基因的表达质粒,原核表达可溶性TATPTD-Ngb,并鉴定、纯化,检测TATPTD-Ngb对皮质神经元的跨膜转导功能。【方法】提取SD大鼠脑组织总RNA,通过RT-PCR法构建编码TATPTD-Ngb的融合基因,克隆入pET28b原核表达载体,转化入大肠杆菌BL21(DE3)pLysS,诱导表达,表达产物进行SDS-PAGE、D19-
2、Tsimple载体购自大连宝生物工程公司;大肠杆菌DH5α由本校药理学教研室胡骏博士赠送。1.1.2试剂 Trizol试剂购自Invitrogen公司;合成cDNA第一链的逆转录试剂盒购自Fermentas公司;TaqDNA聚合、T4DNA连接酶和各种限制性内切酶购于大连宝生物工程公司;X-gal、IPTG购于AMRESCO公司;质粒抽提试剂盒、胶回收纯化试剂及Ni-NTA蛋白亲和纯化琼脂购于QIAGEN公司;抗His-Tag小鼠单克隆抗体购于TIAGEN公司,羊抗小鼠二抗购于武汉博士德生物技术有限公司;氨苄青霉素、卡那霉素、氯霉素均为SIGM
3、A分装;ECL试剂购自PIERCE公司;Neurobasal培养基及B27购自Gibco公司。其余常规试剂均为进口或国产分析纯。1.1.3PCR引物 根据Genbank中大鼠Ngb和TAT-PTD基因序列设计了两条引物,即在Ngb成熟肽基因序列的5′端融合了含有PTD基因序列,由上海生工生物技术有限公司合成。上游引物:5′CATATGAGGAAGAAGCGGAGACAGCGACGAAGAGCTAGCATGGAGCGCCTAGAGTCAGAGCT3′(含NdeⅠ、NheⅠ酶切位点);下游引物:5′GAGCTCTACTCCCCGTCCCAGCCTC
4、G3′(含SacⅠ酶切位点)。扩增产物片段500bp。1.1.4实验动物 SD乳鼠由中山大学实验动物中心提供。1.2 TATPTD-Ngb基因的克隆1.2.1RT-PCR扩增TATPTD-Ngb基因取SD乳鼠脑组织用Trizol试剂提取脑组织总RNA,按逆转录试剂盒说明合成cDNA第一条链,取2μL逆转录产物进行PCR,反应条件如下:94℃预变性5min,94℃30s、68℃40s、72℃1min,循环30次,72℃延伸10min。PCR产物进行0.15g/L琼脂糖电泳分析,并对目标条带切胶回收。1.2.2PCR产物的克隆与测序 PCR产物经胶
5、回收纯化后与pMD19-Tsimple载体用T4DNA连接酶16℃连接2h,转化DH5α感受态,涂布于含氨苄青霉素的LB平板上,菌落经蓝白班筛选,抽提质粒经NdeⅠ/NheⅠ限制性内切酶双酶切鉴定,选取含目标片段的单克隆菌落并送上海英骏生物技术有限公司测序。1.2.3TATPTD-Ngb表达质粒的构建用NdeⅠ/NheⅠ限制性内切酶从阳性TA克隆载体上切下TATPTD-Ngb基因序列并胶回收,与同样酶切的含His-tag的pET28b表达载体16℃连接反应2h,构建表达质粒pET-TATPTD-Ngb,简称pETPN,转化大肠杆菌DH5α感受态
6、,涂布于含50μg/mL卡那霉素的LB平板上,挑选菌落、质粒抽提并经酶切鉴定筛选阳性单克隆,送上海英骏生物技术有限公司测序。1.3TATPTD-Ngb融合蛋白的表达、纯化与鉴定1.3.1TATPTD-Ngb融合蛋白的表达及可溶性分析经酶切鉴定的pETPN质粒转化大肠杆菌BL21(DE3)plysS感受态,形成稳定的高表达细菌株,在含50μg/ml卡那霉素的LB平板上划单菌落,挑取单菌落接种于5mlLB培养液中(含卡那霉素50μg/mL,氯霉素37μg/mL),37℃200r/min振摇过夜;次日按1∶100的比例接种至10mL上述LB培养液中,
7、37℃200r/min振摇,培养约2~3h,A值至0.6左右,加入终浓度为0.4mmol/L的IPTG,37℃200r/min诱导表达0,1,2,4,6,8h,离心收集细菌沉淀,按10∶1的比例的加入20mmol/LTris·Cl溶液,超声破碎细菌,SDS-PAGE电泳分析蛋白表达情况。取诱导表达8h的细菌沉淀超声破碎产物4℃下15000×g离心30min,分别收集上清和沉淀,加入SDS-PAGE电泳上样缓冲液,检测上清和沉淀中TATPTD-Ngb融合蛋白的表达。1.3.2TATPTD-Ngb融合蛋白的gP2+的解剖液洗涤后离心去上清,加入含2
8、mL/LB27的Neurobasal培养基内,以0.5×106/mL的密度种植在用多聚赖氨酸包被好的培养皿中35mm培养皿(2mL/皿)中,置于含体积
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