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时间:2018-07-08
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1、胚胎期豚鼠前庭终器细胞凋亡的检测论文.freel-bryonicdevelopmentAbstract:AIMThemorphologicalchangesandcellapopto-sisofvestibularorganinnormallydevelopingguineapigs-bryonicday(ED)40and50orphologicalchangesinthevestibularorganicro-scopeandapoptosisbyTdT-mediateddeoxyuridinetriphos-phate-b
2、iotinnickendlabelling(TUNEL)methodandtrans-missionelectromicroscopy(TEM).RESULTSAmpullarycristaeormaculaofsacculeandutricleberofhaircellsincreasedandthatoflayersofsupportingcellsdecreased,acpaniedbytheappearanceofneuralsynapses.Thedifferentiatedhaircellsandsupportin
3、gcellsunder,andenoninvestibularendorgansofdevelopingguineapigs.Itmaybere-latedtotheguaranteeofthenormalstructureandthefunc-tionofinnerear.0引言脊椎动物内耳发育中,有关细胞增殖、分化的研究已十分详尽,但对于细胞凋亡的报道却为数不多.鸡[1]、大鼠[2]、小鼠[3]及人类[4]胚胎中,于耳泡区域发现凋亡细胞,有关细胞凋亡的功能及机制尚无定论.鉴于豚鼠内耳结构近于人耳,是内耳研究领域中重要的实验
4、对象.目前尚未发现有关豚鼠内耳发育过程中细胞凋亡的研究资料.我们利用光镜、电镜和TUNEL技术,观察不同胚胎期豚鼠内耳前庭终器的正常发育及细胞凋亡,旨在探讨细胞凋亡在内耳发育中的意义.1材料和方法1.1材料根据雌鼠出现阴道栓及其体质量和体形变化,选择怀孕40和50d白色豚鼠.戊巴比妥纳(50mgkg-1,ip)全身麻醉,40gL-1多聚甲醛心脏灌注固定.迅速取下胎鼠双侧听泡,挑开蜗顶及底回骨壁,去除蹬骨,自蜗尖灌注固定,置于同样固定液中,4℃冰箱8h.1.2方法①HE染色标本制备:将内耳标本以0.1molL-1B冲洗后,置于1
5、00mLL-1EDTA,常温下脱钙12h,250gL-1蔗糖浸泡,4℃过夜.100gL-1明胶定向包埋,标本于Leica恒冷箱切片机,平行于蜗轴切片,厚度10μm.干燥后,切片置入Harris苏木素液染细胞核,10gL-1盐酸乙醇分化,返蓝,5gL-1伊红复染,切片脱水,透明,光镜下观察;②TUNEL检测:采用细胞凋亡检测试剂盒(武汉博士得生物工程有限公司).ED40和ED50前庭组织切片,TBS漂洗后,新鲜配制30gL-1H202室温处理10min;蛋白酶K(1∶100,TBS稀释)室温消化5min;标本加标记缓冲液室温10
6、min甩掉,TdT和DIGdUTP(1∶1)加入标记缓冲液混合,加于标本上,37℃标记2h;加封闭液,室温20min;生物素化抗地高辛抗体(1∶100,封闭液稀释),37℃反应30min;SABC(1∶100,TBS稀释),37℃反应30min;DAB显色.阴性对照省去TdT.每步骤间以TBS漂洗2min×3次.切片依次脱水、透明、封片;③电镜标本制备:内耳标本于显微镜下剥离壶腹,球囊斑及椭圆囊斑,置于25mLL-1戊二醛液固定12h,10gL-1锇酸后固定2h,丙酮梯度脱水,丙酮及环氧树酯浸透包埋.于LKBnova型超薄切片
7、机行超薄切机行超薄切片,厚70nm.醋酸双氧铀,枸橼酸铅双染,JEM2000EX电镜观察并照相.2结果2.1光镜观察①胚胎40d豚鼠前庭终器中,可见壶腹、椭圆囊斑及球囊斑完全分化.壶腹上方为一层高柱样毛细胞,核呈圆形,体积较大,淡染;细胞质丰富,嗜酸性.下方可见二层支持细胞,胞核小,呈椭圆型,深染,紧密压集;细胞质极少.椭圆囊斑及球囊斑可见上方一层毛细胞及下方3~5层支持细胞.前者体积明显增大,胞质丰富;支持细胞内几乎看不见胞质,胞核排列紧密.毛细胞胞核较支持细胞为大,着色淡;②胚胎50d豚鼠前庭终器壶腹感觉上皮中,上方为一层
8、毛细胞及一层支持细胞,在两侧延续为双层支持细胞,下方可见神经纤维.椭圆囊斑和球囊斑感觉上皮可见一层毛细胞及二层支持细胞,结构特点同前.2.2TUNEL检测胚胎40和50d豚鼠壶腹、椭圆囊斑毛细胞和支持细胞均可见核染色为棕黄色细胞,呈强阳性细胞,即凋亡细胞(Fig1).上方一层
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