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时间:2018-07-06
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1、树脂吸附法分离苦瓜皂苷的工艺研究论文【摘要】目的研究苦瓜总皂苷的纯化方法。方法苦瓜醇提的浓缩液,通过经处理的NKA大孔吸附树脂,用不同浓度的乙醇进行梯度洗脱,UV法跟踪检测。结果80%乙醇洗液中苦瓜总皂苷的含量最高,可达到36%。结论NKA大孔吸附树脂可有效地分离提取苦瓜总皂苷。【关键词】苦瓜皂苷提取大孔吸附树脂NKA树脂StudyonExtractionTechnologyofAponinsfromMomordicacharantiaL.byMacroporousAbsorptionResinAbstract:Obj
2、ectiveTostudyontheextractionandpurificationmethodsoftotalSaponinsinMomordicacharantiaL..MethodsMomordicaCharantiaL.ethanolisolatedsolutionspassedthroughtreatedNKAmacroporousabsorptionresin,andadegradientelutionordicacharantiaL.saponins.KeyordicacharantiaL.;Sapon
3、ins;Extraction;Macroporousadsorptionresin;NKAresin苦瓜MomordicacharantiaL.属葫芦科苦瓜属,是人们生活中的一种常用蔬菜,同时也是功能食品原料。国内外不少学者从不同地区、不同品种苦瓜及其种子中分离出了多种生理活性物质,其中苦瓜中含有的苦瓜皂苷、生物碱、植物甾醇等成分具有显著的降糖作用[1~4]。鉴于苦瓜皂苷的功效及药用价值.freelomordicosideA,实验室自制;大孔吸附树脂,商品号NKA、AB8和D101树脂,南开大学化工厂;LD52A离
4、心机,北京医用离心机厂;玻璃层析柱:20mm×600mm;旋转蒸发器,上海精科实业有限公司;Cary紫外可见分光系统,美国VARIAN公司;薄层层析板G,青岛海洋化工厂分厂;玻璃点样毛细管,华西医科大学仪器厂;浓硫酸、冰醋酸和高氯酸等均为分析纯。1.2分析方法1.2.1苦瓜皂苷的含量测定[5]测定波长的选择:吸取MomordicosideA甲醇标准液(1.274mg/ml)80μl,自然挥干溶剂,加5%草醛冰醋酸溶液0.2ml,高氯酸0.8ml,摇匀、密塞,于60℃水浴加热15min,冰浴冷却,加冰醋酸5.0ml,用
5、紫外可见分光系统测定吸收曲线[6]。选用545nm为测定波长。建立回归方程:分别吸取40,80,120,160,200μl甲醇标准液置10ml具塞试管中,同上法测定吸收度。皂苷含量和吸收值经回归处理,回归方程为:A=0.0058C0.1125,r=0.9994,(n=5)。苦瓜皂苷含量在40~200mg线性较好。样品溶液制备:洗脱液减压回收乙醇至干,用少量甲醇溶解后,3000r/min离心后移置10ml容量瓶中,并稀释至刻度,摇匀备用。样品皂苷质量分数的测定:同标准曲线制作方法,在最大吸收波长处测定吸光度,从标准曲线
6、中找出对应的质量浓度。总皂苷质量分数%=(样品液皂苷的质量浓度×样品液的体积/苦瓜粉末质量)×100%1.2.2洗脱液中总糖含量的测定洗脱液中总糖含量采用3,5二硝基水杨酸比色定糖法测定。采用无水葡萄糖配制标准溶液,制作标准曲线。于520nm波长处测吸光度值,以吸光度值为纵坐标,以葡萄糖标准浓度为横坐标绘制标准曲线。糖的标准曲线见图2(Y=2.9365X-0.1229,r=0.9984)。1.2.3洗脱液中蛋白含量的测定采用Folin酚法测定洗脱液中蛋白质的浓度。以空白液为参比,在640nm处比色测定。以吸光度值为
7、纵坐标,标准蛋白含量为横坐标,绘制标准曲线见图3(Y=0.0041X-0.0326,r=0.9967)。1.2.4苦瓜皂苷TLC[7]展开剂:氯仿甲醇水(65∶35∶10,5~10℃放置12h以上)的下层液为展开剂。显色剂:甲液取水25ml,缓慢加硫酸50ml,放冷后,再加乙醇25ml,摇匀;乙液:8%香草醛无水乙醇溶液。用时将5份甲液与1份乙液混合。临用现配,80℃烘至斑点清晰。2方法2.1树脂的筛选2.1.1大孔树脂的预处理先于吸附柱内加入相当于装填树脂体积0.4~0.5倍的乙醇,然后将新树脂投入柱中,使其液面
8、高于树脂上端3mm处,浸泡24h;用2倍柱体积(BV)乙醇,以2BV/h的流速通过树脂,并浸泡4~5h;用乙醇以2BV/h的流速通过树脂层,洗至流出液不呈白色浑浊为止,并用水以同样流速洗净乙醇。用2BV的2%HCl溶液,以4~6BV/h的流速通过树脂层,并浸泡2~4h,而后用水以同样流速洗至流出水pH值为中性;用2BV的2%NaO
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