早期断奶应激对仔猪肠黏膜屏障功能的影响及其监测与修复

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动物营养学报2014,26(11):3197-3202ChineseJournalofAnimalNutritiondoi:10.3969/j.issn.1006-267x.2014.11.002早期断奶应激对仔猪肠黏膜屏障功能的影响及其监测与修复1,211,2*1*王向荣贺建华戴求仲方热军(1.湖南农业大学动物科技学院,长沙410128;2.湖南省畜牧兽医研究所,长沙410131)摘要:在养猪生产中,常用日增重来衡量断奶仔猪的健康和生长性能,而影响断奶仔猪日增重的主要因素是断奶时所面临的大量应激(饲粮改变、母仔分离、环境变化等)。断奶应激会使仔猪肠道发生组织形态学和生理学上的变化,如肠绒毛萎缩、隐窝增生、肠黏膜通透性增强等,这些变化会引起仔猪消化和吸收功能下降或免疫机能降低,最终导致腹泻和生长性能下降。本文针对早期断奶应激引起的仔猪肠黏膜结构和屏障功能的变化作一简要综述,总结了一些可以作为评价肠黏膜结构和功能的一些标记物,并列举了饲粮中可用来缓解断奶应激损伤的一些饲料原料或添加剂,以期为仔猪生产和断奶应激的研究提供参考。关键词:早期断奶;肠黏膜结构;屏障功能;仔猪中图分类号:S828文献标识码:A文章编号:1006-267X(2014)11-3197-06在自然状态下,仔猪断奶是一个循序渐进的参考。[1-2]过程,平均时间超过17周。在许多规模化、集约化的猪场,为了提高母猪的繁殖率,往往运用早1早期断奶应激对仔猪生理机能的影响期断奶技术,将仔猪断奶时间提早到7~35日龄1.1生长[2-3](欧盟要求不少于28日龄),从而提高母猪年仔猪断奶后,饲粮从易消化的、适口性好的液产胎数。由此引起的应激是猪在整个生长过程中态母乳变成了难消化的、适口性差的固体饲料。遇到的最大的应激之一,尤其在断奶后的第1天,因此,断奶初期采食量会下降,仔猪因为营养不[4]能量摄入量不能满足需要,肠道完整性受损,免良,短期内生长速度也会下降。采食量降低的程[5-6]疫系统功能紊乱,肠上皮细胞严重氧化损伤,度和持续时间并不是固定不变的,断奶后第1周[7]仔猪的健康和生长受到影响。因此,断奶后仔末,代谢能的摄入量是断奶前摄入母乳所含代谢[4]猪生长迟滞、腹泻等问题普遍存在。虽然养殖能的60%~70%,之后约2周才能完全恢复断奶前[8]环境、营养健康和饲养管理等技术水平的提高可代谢能摄入水平,生长性能也会随着采食量的[2,4]减少断奶应激的不利影响,但只有更深入地了降低而降低。仔猪断奶后的第1天,体重通常会解应激的生物学影响才能摸索出更为完善的克服下降100~250g,损失掉的体重在断奶4d后才能[5][8]断奶应激的策略。本文对断奶应激如何影响仔完全恢复。另外,断奶后第1周的增重对上市猪肠黏膜结构和屏障功能进行了简要的综述,以日龄(上市体重约110kg)有一定影响,断奶后第1期为寻找缓解和克服仔猪断奶应激的策略提供周日增重超过227g/d的仔猪比日增重只有0~收稿日期:2014-05-05基金项目:国家自然科学基金面上项目(31172218);“十二五”国家科技支撑项目“安全高效饲料添加剂研发与产业化示范”(2011BAD26B002-5)作者简介:王向荣(1982—),男,湖南益阳人,助理研究员,博士研究生,从事动物营养与饲料科学研究。E-mail:cooliowxr@163.com*通讯作者:戴求仲,研究员,博士生导师,E-mail:daiqiuzhong@gmail.com;方热军,教授,博士生导师,E-mail:fangrj63@126.com 3198动物营养学报26卷[9][25]150g/d的仔猪上市日龄要早6~10d。逐渐恢复,14d肠形态基本恢复。Itoh等和[26]1.2腹泻Prasad等在小鼠上的研究认为,受损肠黏膜形腹泻是仔猪断奶后的一个非常重要的临床症态的恢复只是肠上皮细胞重新生长,在最初恢复状,已有大量的研究阐明仔猪腹泻的病理生理学阶段,重建的上皮细胞并未完全成熟,其功能也尚原理。最初,人们认为断奶仔猪的腹泻与肠道内未完全恢复,新增殖的细胞需要通过细胞外基质容物或粪便中的大肠杆菌、猪痢疾蛇形螺旋体和的改造及深部细胞共同作用才能恢复正常结构和[10-12][24]产气荚膜梭菌等病原微生物有关。但有试验功能。栾兆双等在断奶仔猪上的研究也表明,表明,单纯的大肠杆菌或是其他病原微生物并不仔猪断奶后肠道屏障功能的恢复在形态学重建[13]足以导致腹泻,而需要其他的因素一起参与。之后。[14]1984年,Miller等提出了“过敏理论”,随后陈2.2仔猪肠黏膜屏障功能[15]代文等进一步证实仔猪肠道对饲粮抗原过敏是腹泻、感染和手术等应激状态会影响肠黏膜仔猪断奶后腹泻的根本原因,过敏和耐受程度与结构(黏膜萎缩、破损等),还会引发肠黏膜通透性[16]饲粮类型有关。伍晓雄认为断奶仔猪腹泻主要增高、细菌和毒素移位等负面作用,导致暂时或较是断奶应激造成内分泌紊乱而引起肠道损伤,使长时间的肠屏障损害。早期断奶应激跟其他应激胃肠道消化酶活性和吸收能力下降,导致腹泻发状态一样,也会导致仔猪肠屏障功能损伤。Moes-[21]生,推测是应激源通过“下丘脑-垂体-肾上腺轴”er等研究认为,断奶应激诱发肠黏膜功能障碍和“交感-肾上腺髓质系统”引起的一系列神经内由肠道促肾上腺皮质激素释放因子(CRF)受体介[17]分泌反应。王莉等则认为断奶仔猪腹泻与仔猪导,通过肠神经和前列腺素类合成路径来激活。[27]胃肠道的黏膜上皮和胃腺、肠腺内热应激蛋白70Smith等利用仔猪断奶应激模型评估了早期断[18](HSP70)表达量有关。McLamb等认为早期断奶应激对肠道屏障功能和肠道健康的影响,发现奶应激会明显改变仔猪免疫和生理反应,但临床与晚断奶仔猪(23~28日龄断奶)相比,早断奶表现与是否受到病原菌感染有关。以上研究结果(15~21日龄断奶)会导致仔猪在5~9周龄出现[28]表明,断奶仔猪腹泻并不是由单一因素引起,而是持续性肠黏膜损伤。钱仲仓等研究了21日龄由断奶应激引起的一系列复杂生理变化所致。断奶仔猪在21、22、25、28和35日龄的血清皮质醇、血浆D-乳酸含量和二胺氧化酶活性,得出结2早期断奶应激对仔猪肠黏膜结构和屏障论:断奶应激导致仔猪肠屏障严重受损,肠黏膜通功能的影响透性增加先于形态变化,恢复滞后于形态学重建,仔猪断奶后随着采食量的下降,断奶仔猪肠肠黏膜屏障功能更好地反映了断奶仔猪的肠道道结构和功能(肠道吸收和分泌功能、消化酶活性状态。[19]等)均发生生理学改变。Pluske等认为,这种生理学改变会影响小肠的吸收能力,并影响饲料转3断奶仔猪肠黏膜结构与功能的监测与化率。另有研究认为,断奶应激除了影响肠道的修复[20-21]消化和吸收能力外,还影响肠黏膜屏障功能。3.1监测2.1仔猪肠黏膜结构目前直接观察肠道结构和屏障功能仍较为困[29]许多研究表明,断奶应激诱发仔猪小肠急性难,多采用间接方法进行监测。Montagne等研或持久性结构和功能改变主要表现在断奶后肠绒究了仔猪在断奶后2周肠道在形态学、生理学和[19-20,22]毛变短(萎缩)和隐窝深度增加。Hamp-生态学上的时空变化规律,找到了断奶后肠道成[23]son研究表明,21日龄断奶仔猪,断奶后第1天熟的一些标记物,如肠绒毛高度、隐窝深度、消化肠绒毛高度比断奶前迅速减少了25%~35%。断酶活性、回肠葡萄糖的吸收和基底电阻、结肠内容奶后绒毛萎缩的现象大约持续5d,此时肠绒毛大物中乳酸杆菌和肠球菌数量、盲肠和结肠内容物约只有初始高度的1/2,未断奶的仔猪肠绒毛高度pH等。肠绒毛高度、隐窝深度早已被普遍用来研[30]变化很小,在断奶11d后对隐窝深度的影响基本究肠黏膜的结构。肠黏膜屏障功能通常可从离[24]恢复。栾兆双等发现,断奶后7d肠黏膜形态子分泌、渗透性和黏液分泌等3个方面进行评价。 11期王向荣等:早期断奶应激对仔猪肠黏膜屏障功能的影响及其监测与修复3199[31]钟武装等研究认为,可溶性血清细胞间黏附分猪肠黏膜结构和屏障功能也具有积极作用。[39][40]子-1(sICAM-1)、血浆D-乳酸含量和二胺氧化Moretó等和Peace等研究表明,血浆蛋白粉酶活性可间接反映肠黏膜屏障功能。另外,血清可降低断奶仔猪空肠黏膜通透性,改善小肠黏膜[28]皮质醇含量、尿乳果糖与甘露醇比率、尿乳果糖屏障功能,减少腹泻发生。蛋白质限制饲粮中补[32][33]回收量、小肠碱性磷酸酯酶活性、小肠黏膜充游离氨基酸可提高肠道营养吸收、转运以及肠[41]层黏连蛋白和Ⅳ型胶原含量等指标也常用来监测道健康。饲粮补充精氨酸可对断奶应激所引起肠黏膜屏障功能。近年来,应用尤斯灌流室(Us-的代谢改变(如脂质代谢和氨基酸代谢)起到一定[42]singchamber)系统来检测肠黏膜屏障功能的研究修复作用,还具有缓和氧化应激反应和抑制炎[43]报道越来越多,主要监测通过肠黏膜上皮的同位症性细胞因子表达的作用。还有研究发现N-素标记或荧光素标记的大分子物质比例及黏膜电乙酰-半胱氨酸也具有缓解断奶引起的肠黏膜损[34]143[44][45]参数,如:C-甘露醇、H-甘露醇、硫氰酸盐荧伤的作用。胡彩虹等研究认为高剂量氧化光素(FITC)右旋糖苷等的渗透率和跨膜电势锌有阻止上皮细胞渗透增加,保护肠黏膜屏障功[34](Vt),电荷流量(Isc),钳电压(Rt)等电参数。能的作用。进一步研究发现,饲粮中以氧化锌蒙为探索断奶应激对肠黏膜影响的可能机制,脱石混合物的形式补充500或750mg/kg的锌,越来越多的研究者开始从分子生物学的角度展开对提高断奶仔猪肠黏膜完整性、提高胰腺和小肠研究,并认为早期断奶后仔猪肠道的通透性增加,内容物中消化酶活性等方面的作用与以氧化锌形[46]肠屏障功能破坏,可能是断奶应激使得肠上皮细式补充2000mg/kg锌的效果相当。另外,益[47-48][49][50]胞紧密连接蛋白OccludinmRNA表达量下降所生菌、乳铁蛋白、壳聚糖等也能改善断[35]致。还有研究表明,肠黏膜上皮HSP70表达量奶应激对肠黏膜结构和功能的影响。[17]增加可增加肠道对断奶应激的抵抗力。Tao[36]等研究认为,断奶对仔猪小肠microRNA(miR-4小结NA)转录组有显著的影响,断奶后1、4和7d,分断奶应激会损伤仔猪肠黏膜结构和屏障功别有16、98和22个miRNA出现差异表达,这些能,而在损伤后恢复过程中,肠黏膜功能的恢复滞差异表达的miRNA与仔猪小肠的代谢、应激反应后于肠道形态结构的恢复。目前多采用间接方法和免疫功能密切相关。或指标来监测肠道结构和功能的变化。因此,今3.2修复后在研究断奶应激对仔猪肠道的影响时,应更关在养猪生产中,通过减少断奶应激来提高仔注肠黏膜的屏障功能,还应寻找更快速、有效地监猪采食和生长性能的方法有很多,如推迟断奶日测肠黏膜结构和屏障功能的标记物或指标,更深龄、采用液态饲粮、调整饲粮配方和改善养殖环境入地探索断奶应激对肠黏膜结构和屏障功能损伤等。推迟断奶日龄并在哺乳期补饲可提高断奶仔的机理,最终才能建立能有效缓解断奶应激的方猪采食量,减少断奶应激的影响,但并不能提高小案,从而提高仔猪生产效率。[2][37]肠黏膜的功能。Spreeuwenberg等研究认为,断奶后的4d内,饲粮组成(乳糖蛋白质比)并不参考文献:是维持仔猪肠黏膜屏障功能的最重要因素,持续[1]JENSENP,RECNB.Whentowean-observations的低采食量和应激才是导致肠道屏障功能不良的fromfree-rangingdomesticpigs[J].AppliedAnimal罪魁祸首。其具体原因和机制虽不十分清楚,但BehaviourScience,1989,23(1/2):49-60.[2]VANDERMEULENJ,KOOPMANSSJ,DEKKER可以肯定断奶应激是主要因素之一。许多研究者RA,etal.Increasingweaningageofpigletsfrom4to开展了肠黏膜结构和屏障功能损伤后肠黏膜修7weeksreducesstress,increasespost-weaningfeed[38]复、保护或干预的研究。谢天宇等对肠黏膜免intakebutdoesnotimproveintestinalfunctionality疫屏障的功能特点及一些保护性措施做了详细的[J].Animal:anInternationalJournalofAnimalBio-综述,总结了添加益生菌、调控饲粮营养因子和预science,2010,4(10):1653-1661.防应激等主要方法。[3]COLSONV,ORGEURP,FOURYA,etal.Conse-许多研究证实,一些饲料原料或添加剂对仔quencesofweaningpigletsat21and28dayson 3200动物营养学报26卷growth,behaviourandhormonalresponses[J].Ap-thepig[J].ResearchinVeterinaryScience,1984,36pliedAnimalBehaviourScience,2006,98(1/2):70-(2):187-193.88.[15]陈代文,杨凤,陈可容.补料及开食料中不同种类蛋[4]VANBEERS-SCHREURSHMG,BRUININXEM白质对仔猪过敏反应及腹泻程度的影响[J].畜牧AM.Nutritionalmanagementtopreventdisordersin兽医学报,1995,26(3):200-206.post-weaningpighealth[M]//Nutritionandhealthof[16]伍晓雄.断奶应激导致仔猪腹泻的内分泌机理研究thegastrointestinaltract.Wageningen:WageningenAc-[J].动物医学进展,1999,20(2):7-8.ademicPublishers,2002:135-158.[17]王莉,汪蕊,王希彪.仔猪HSP70蛋白表达与断奶腹[5]杨家军,张敏红,冯京海.早期断奶对仔猪肠上皮细泻关系研究[J].东北农业大学学报,2011,42(12):胞氧化与损伤的影响[J].安徽农业大学学报,29-32.2013,40(1):77-82.[18]MCLAMBBL,GIBSONAJ,OVERMANEL,etal.[6]YINJ,WUMM,XIAOH,etal.DevelopmentofanEarlyweaningstressinpigsimpairsinnatemucosalantioxidantsystemafterearlyweaninginpiglets[J].immuneresponsestoenterotoxigenicE.colichallengeJournalofAnimalScience,2014,92(2):612-619.andexacerbatesintestinalinjuryandclinicaldisease[7]CAMPBELLJM,CRENSHAWJD,POLOJ.Thebi-[J].PLoSOne,2013,8(4):e59838.ologicalstressofearlyweanedpiglets[J].Journalof[19]PLUSKEJR,HAMPSONDJ,WILLIAMSIH.Fac-AnimalScienceandBiotechnology,2013,4(1):19-torsinfluencingthestructureandfunctionofthesmall22.intestineintheweanedpig:areview[J].Livestock[8]LEDIVIDICHJ,SVEB.EffectsofunderfeedingProductionScience,1997,51(1):215-236.duringtheweaningperiodongrowth,metabolism,and[20]BOUDRYG,PRONV,LEHUROU-LURONI,ethormonaladjustmentsinthepiglet[J].DomesticAni-al.Weaninginducesbothtransientandlong-lastingmalEndocrinology,2000,19(2):63-74.modificationsofabsorptive,secretory,andbarrier[9]TOKACHMD,GOODBANDRD,NELSSENJL,etpropertiesofpigletintestine[J].TheJournalofNutri-al.Influenceofweaningweightandgrowthduringthetion,2004,134(9):2256-2262.firstweekpostweaningonsubsequentpigperformance[21]MOESERAJ,KLOKCV,RYANKA,etal.Stress[C]//KansasStateUniversitySwineDay1992.Man-signalingpathwaysactivatedbyweaningmediatein-hattan:KansasStateUniversity,1992:19-21.testinaldysfunctioninthepig[J].AmericanJournalof[10]TZIPORIS,CHANDLERD,SMITHM,etal.FactorsPhysiologyGastrointestinalandLiverPhysiology,contributingtopostweaningdiarrhoeainalargeinten-2007,292(1):G173-G181.sivepiggery[J].AustralianVeterinaryJournal,1980,[22]MCCRACKENBA,SPURLOCKME,ROOSMA,56(6):274-278.etal.Weaninganorexiamaycontributetolocalinflam-[11]FAIRBROTHERJM,NADEAUE,GYLESCL.mationinthepigletsmallintestine[J].TheJournalofEscherichiacoliinpostweaningdiarrheainpigs:anNutrition,1999,129(3):613-619.updateonbacterialtypes,pathogenesis,andprevention[23]HAMPSOND.Alterationsinpigletsmallintestinalstrategies[J].AnimalHealthResearchReviews,structureatweaning[J].ResearchinVeterinarySci-2007,6(1):17-39.ence,1986,40(1):32-40.[12]LECCEJG,BALSBAUGHRK,CLAREDA,etal.[24]栾兆双,姚丽丽,傅振宁,等.断奶应激对仔猪肠形RotavirusandhemolyticenteropathogenicEscherichia态、肠黏膜屏障和p38丝裂原活化蛋白激酶信号通coliinweanlingdiarrheaofpigs[J].JournalofClini-路的影响[J].动物营养学报,2012,24(11):2237-calMicrobiology,1982,16(4):715-723.2242.[13]HAMPSONDJ,HINTONM,KIDDERDE.Coliform[25]ITOHH,YAGIM,HASEBEK,etal.Regenerationofnumbersinthestomachandsmallintestineofhealthysmallintestinalmucosaafteracuteischemia-reperfu-pigsfollowingweaningatthreeweeksofage[J].sioninjury[J].DigestiveDiseasesandSciences,JournalofComparativePathology,1985,95(3):353-2002,47(12):2704-2710.362.[26]PRASADM,ITOS,SILENW.Functionalstudiesof[14]MILLERB,NEWBYT,STOKESC,etal.Influenceinvitroratdistalcolonbeforeandafterrestitution[J].ofdietonpostweaningmalabsorptionanddiarrhoeainSurgery,1997,121(4):430-439. 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