酶解实验步骤

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1、第四节:凝胶蛋白质点的酶解一.蛋白质点酶解准备工作：1．检查冻干机，调好水浴锅（37℃，56℃）2．检查各种试剂的量是否足够（DTTIAANH4HCO3）3．检查酶解房卫生状况每一步注意事项：1．每一步加入的液体量视胶块大小定，一般是50uL/管2.每次震荡后随手甩一下，以便把胶块和管壁上的液滴甩下来3.每次打开EP管盖子前，确认胶块在管内，并将胶块甩至管底。开盖子动作尽量轻巧，以免胶块弹出。4．在冻干样品后，要确保样品在管底，以防样品与封口膜一起被去掉。酶解前配制1）、100mmol/L的NH4HCO3参考配制10mL称79.06mgNH4HCO3溶于10mL水中以后每一步25mmo

2、l/L的NH4HCO3可用100mmol/L的NH4HCO3稀释。2）、1mol/L的DTT参考配制10ML称1.55gDTT溶于10mL水中，1mL分装，避光贮存（锡箔包），-20度永久保存酶解步骤:调水浴锅到37℃以便做脱色用，此外，调水浴锅到57℃，以便做还原用。1.冲洗胶块：用水洗衣胶块2次，2.脱色：用含有25mmol/L的NH4HCO3的50%的乙腈37℃保温30min。如第一次脱色不完全可再脱一次3.干燥：吸出液体后，先加50%乙腈，再加100%的乙腈。4．还原：加入还原剂，封口，57℃水浴一小时，还原蛋白质。还原剂：25mmol/L的NH4HCO3（含10mmol/LD

3、TT）参考配制方法（4mL）：6.2mgDTT溶于4mL25mmol/L的NH4HCO3中注意事项：1.注意在水浴锅上写纸条标明使用者名字，水温和使用的时间段，方便实验之间的协调和发生停电等意外情况时别的同学帮助临时处理样品。2．水浴锅用完后恢复到还原前的初始状态，以免后来的同学做实验时因为习惯或者经验忽略此处造成不必要的失误。5．烷基化将样品从水浴锅中取出后，室温冷却，去掉液体，迅速加入同样体积的烷基化试剂室温暗处放置45min，使之碘乙酰胺化。烷基化试剂：25mmol/L的NH4HCO3（含55mmol/LIAA）参考配制方法（4mL）：40.69mgIAA溶于4mL25mmol/

4、L的NH4HCO3中注意事项:1、样品多的时候，可以将先加了烷基化试剂的样品先放入暗处，并记住放入顺序和时间，以便取出时按时间顺序处理。2、注意实验时暗处的卫生情况，应该放在干净处，且建议在取出后先用酒精把样品盒擦拭后再做后续实验。6．反应完成后去掉液体，依次用25mmol/L的NH4HCO3溶液，50%的乙腈，100%的乙腈冲洗胶块，每次振荡后放置10min，去掉液体。7．重复6的操作。8．去掉液体后，用封口膜封口，扎孔，冻干30min，注意该步要完全冻干,这对蛋白质点的酶解很重要。（乙腈效果好可不需此步）9.酶解每管加入适量（约25ul）的酶液（切胶仪切的胶块每管加4uL酶液），冰

5、上放置30min(吸胀就好，时间自己控制)。取20uL1mMHCl加入Trypsin酶中，得1ug/uL的原液,按2uL每管分装每2uL酶液用98uL覆盖液（10%乙腈，25mmol/L的NH4HCO3）稀释到0.02ug/uL（即20ug酶稀释到1ml），现用现配。参考覆盖液配制（2mL）100mmol/LNH4HCO3500uL100%乙腈200uL双蒸水1.3mL注意事项：酶从冰箱取出后所有操作过程，包括样品加酶后，都要放到冰上。10．检查酶液吸胀情况，多余的酶液吸走，酶液不够，即胶块中仍有白色，则再加入适量酶液。11．加覆盖液80uL封口，37℃保温16-18小时。蛋白质酶解后

6、样品的提取1.将样品从37度水浴锅中取出后，1%终止酶解。10000g/1min.2.将上清转移到干净的EP管中。3.在剩余胶块中加入萃取液（2.5%TFA,67%ACNforMALDI,5%FormicAcid67%ACNforESI）,37%保温30min。4.超声15min，间隔5min重复超声15min。水温不超过40度。5.10000g/1min，合并上清。6.冷冻离心干燥至2-5ul供质谱检测。二.银染蛋白质点酶解准备工作：1．检查冻干机，水浴锅能否正常使用2．检查各种试剂的量是否足够3．检查酶解房卫生状况每一步注意事项：1．每一步加入的液体量视胶块大小定，一般是50uL/

7、管2.每次震荡后随手甩一下，以便把胶块和震荡在管壁上的液滴甩下来3.每次打开EP管盖子前，确认胶块在管内，并将胶块甩至管底。开盖子动作尽量轻巧，以免胶块弹出。4．在冻干样品后，要确保样品在管底，以防样品与封口膜一起被去掉。酶解前配制100mM的NH4HCO3参考配制10mL称79.06mgNH4HCO3溶于10mL水中以后每一步25mM的NH4HCO3可用100mM的NH4HCO3一份，加3份水稀释。酶解步骤：1.水洗：用双蒸水洗银染以后的胶,