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时间:2018-08-23
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1、5-氮-2′-脱氧胞苷诱导膀胱癌EJ细胞凋亡研究【摘要】 [目的]探讨5-氮-2′-脱氧胞苷(5-Aza-CdR)诱导膀胱癌EJ细胞凋亡机制。[方法]以不同浓度的5-Aza-CdR作用于膀胱癌EJ细胞,以四甲基偶氮唑蓝(MTT)法检测细胞的增殖程度,原位凋亡细胞检测技术(TUNEL)和流式细胞术(FCM)检测5-Aza-CdR对膀胱癌EJ细胞凋亡和细胞周期的影响。[结果]EJ细胞加入不同浓度的5-Aza-CdR(0.625,1.25,2.50,5.00mg/ml),与对照组相比各组EJ细胞增长速度减慢。与对照组相比,不同浓度的各组
2、5-Aza-CdR(0.625,1.25,2.50,5.00mg/ml)可以显著降低EJ细胞的增殖比和增高EJ细胞的凋亡指数(P<0.05),且与5-Aza-CdR呈浓度依赖关系(P<0.05);不同浓度的5-Aza-CdR作用EJ细胞后G0/G1期细胞明显增加(P<0.05)。[结论]5-氮-2′-脱氧胞苷诱导膀胱癌EJ细胞凋亡并使EJ细胞阻滞于G0/G1期,从而抑制膀胱癌EJ细胞的增殖。【关键词】5-氮-2′-脱氧胞苷 膀胱肿瘤 凋亡 StudyonEJCells’ApoptosisInducedby5-Az
3、a-2′-decxycytidine(5-Aza-CdR)5-氮-2′-脱氧胞苷(5-Aza-2′-decxycytidine,5-Aza-CdR)是一种特异性甲基转移酶抑制剂,通过去甲基化作用可使多种CpG岛高甲基化的抑癌基因重新表达,恢复抑癌功能。但5-氮-2′-脱氧胞苷是否可以通过诱导肿瘤细胞凋亡达到治疗肿瘤尚少见报道。本研究以膀胱癌EJ细胞株为研究对象,以不同浓度的5-Aza-CdR作用于EJ细胞,观察5-Aza-CdR对EJ细胞凋亡和细胞周期的影响,为膀胱癌的治疗提供新的线索。1材料与方法1.1材料膀胱癌细胞株EJ细胞购自
4、北京大学泌尿外科研究所。5-Aza-CdR购自Sigma公司;PRMI1640培养基、新生牛血清购自GIBCO公司;原位凋亡细胞检测技术(TdT-mediateddUTPnick-endlabeling,TUNEL)试剂盒购自武汉博士德公司。其它试剂均为分析纯。1.2实验方法细胞培养:将复苏的EJ细胞培养于含10%新生牛血清的PRMI1640培养基中,37°C,100%湿度,5%CO2,95%空气,每24h换液1次。四甲基偶氮唑蓝(MTT)法检测细胞增殖程度:4将培养的EJ细胞按随机原则分为对照组与实验组。当细胞达到亚融合状态时,常
5、规制成单细胞悬液,以5000个/孔将细胞接种于96孔板,每组4个平行孔。培养24h后,4℃冰箱2h,使细胞同步化。弃去培养液每孔按分组要求分别加入不同量的5-Aza-CdR(1mg/ml)及无血清培养液,使各孔的终体积均为200μl,各组5-Aza-CdR的终浓度分别为0、0.625、1.25、2.5及5mg/ml,每一浓度重复4孔。37℃,5%CO2,培养48h后弃去培养液,各孔加入MTT20μl(5mg/ml),37℃孵箱4h;各孔加入二甲基亚砜150μl,避光振荡10min,酶标仪640nm波长测定各孔吸光值,以增殖比(pro
6、liferationratio)表示增殖程度(增殖比=实验组吸光值/对照组吸光值×100%)。原位凋亡细胞检测技术检测细胞凋亡:采用六孔板盖玻片培养法,调整细胞密度至5×104/孔,培养24h后,吸弃培养液,每孔按分组要求分别加入不同量的5-Aza-CdR和无血清培养液,使各孔的终体积均为2ml,每组4个平行孔,各组5-Aza-CdR的终浓度分别为0、0.625、1.25、2.5及5mg/ml。37℃,5%CO2,培养48h后,以4%多聚甲醛固定,按原位凋亡细胞检测试剂盒中说明书进行操作,细胞核呈棕黄色染色判定为凋亡细胞。光镜下随机
7、选取10个视野计数1000个细胞。凋亡指数(apoptoticindex,AI)=凋亡细胞数/总细胞数×100%。流式细胞术(flowcytometry,FCM)检测细胞周期时相变化:用培养瓶培养细胞,按照随机分组原则,将培养的细胞分为5组:空白对照组加入2ml无血清培养液,另4组加入2ml5-Aza-CdR(1mg/ml),每组4个平行孔,各组5-Aza-CdR的终浓度分别为0、0.625、1.25、2.5及5mg/ml。细胞经24h培养后,胰酶消化,70%冷乙醇固定,碘化丙啶(PI)避光染色,用FACSort型流式细胞仪进行细胞
8、周期的分析。1.3统计分析采用SPSS10.0软件包进行统计分析,方差分析组间差异(t检验)。2结果2.1MTT法检测细胞增殖程度5-Aza-CdR对EJ细胞的增殖有抑制作用,加入5-Aza-CdR后,与空白对照组相比,不同浓度5-A
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