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时间:2018-05-08
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1、鳖甲抗肝纤维化活性组分的研究的论文作者:唐尹萍,胡春玲,施婧妮,高建蓉,姚航平,刘焱文【摘要】目的筛选鳖甲抗肝纤维化的活性组分。方法传代培养的hsc-t6与鳖甲bj61~bj68共同培养72h后,采用mtt比色法测定各浓度组hsc-t6的增殖情况。结果bj61~bj65和bj68对hsc-t6细胞无抑制作用,而bj66和bj67有较强的抑制作用。结论bj66和bj67为鳖甲的活性组分。【关键词】鳖甲;活性组分;mtt比色法 [abstract]objectivetoscreentheactiveconstituentf
2、romcarapaxtrionycis.methodssecondaryculturehsc-t6invitro,ttassaypactsoftrionyxsinensisatdifferentconcentrationsonhsc-t6.resultsbj61-bj65andbj68hadnoinhibitoryeffectonhsc-t6cells,butbj66andbj67hadastrongerinhibitoryeffectonhsc-t6cells.conclusionbj66andbj67istheact
3、iveconstituentfromcarapaxtrionycis. [keytt 鳖甲为鳖科动物鳖trionyxsinensisann的背甲,具有滋阴潜阳、软坚散结、退热除蒸的功效[1]。.鳖甲常用于治疗慢性肝病、预防肝硬化[2~4],是治疗肝纤维化疾患的常用中药,但鳖甲的活性成分鲜见报道。本实验依据活性筛选的思路,在高建荣等[5]确定分子量小于6000的多肽为鳖甲抗肝纤维化活性部位的基础上,采用葡聚糖凝胶g-25、葡聚糖凝胶g-15进一步分离为8个组分,再用mtt比色法进一步筛选鳖甲抗肝纤维化的活性组分,为后续
4、的筛选活性单体奠定了基础。 1材料与方法 1.1材料 1.1.1对象大鼠肝星状细胞系(hsc-t6)由浙江大学附属第一医院肝病研究所提供。 1.1.2试验药物及主要试剂(1)试验药物:鳖甲(醋制品)由浙江衢化医院提供,粉碎后过80目筛。(2)细胞培养试剂:胰蛋白酶(trypsin)、非必需氨基酸(neaa)、high-dmem培养基,gibco产品;胎牛血清,武汉三利生物技术有限公司产品;青霉素、链霉素,华北制药股份公司产品;二氧化碳(co2),武汉市明辉气体科技有限公司。(3)细胞增殖用试剂:二甲基亚砜(dms
5、o)、噻唑蓝(mtt),武汉凌飞科技有限公司。(4)葡聚糖凝胶g-25、葡聚糖凝胶g-15:北京慧得易公司。 1.1.3仪器co2培养箱,日本sanyo公司产品;全自动酶标仪,美国bio-rad公司产品;倒置相差显微镜,日本olympus公司产品;洁净工作台,上海博迅医疗设备厂产品。 1.2试验方法 1.2.1鳖甲透析物干燥粉末的制备精密称取鳖甲粉末100g,加200ml双蒸水超声提取20min,抽滤,残渣加水100ml超声10min,抽滤,合并滤液,冷冻干燥得冻干粉。再用少量水将冻干粉溶解,装于透析膜内,用100
6、ml水于4℃透析5h,透析2次,合并膜外溶液,冷冻干燥。最后得鳖甲干燥粉末为淡黄色絮状粉末,即为鳖甲的抗肝纤维化活性肽类物质[5](m<6000)。 1.2.2鳖甲抗肝纤维化活性部位不同组分的分离称取50g葡聚糖凝胶g-25(sephadexg-25),加入过量双蒸水,加热溶胀约2h,放置冷却至室温,装柱。取0.3653g醋鳖甲透析物干燥粉末,用双蒸馏水8ml溶解,加入色谱柱上端,用蒸馏水洗脱,收集流分,每份10ml,共收集8个流分,即将鳖甲抗肝纤维化活性肽类物质分离为8个部位,分别记录为bj1~bj8,其中bj
7、4、bj6和bj7为活性部位[6]。再称取70g葡聚糖凝胶g-15(sephadexg-15),加入过量双蒸水,加热溶胀约2h,放置冷却至室温,装柱。取0.4012gbj6样品,用双蒸馏水5ml溶解,加入色谱柱上端,用蒸馏水洗脱,收集流分,每份10ml,共收集8个流分,即将鳖甲抗肝纤维化活性部位bj6分离为8个组分。提取分离流程见图1。 图1提取分离流程1.2.3hsc的培养及传代将传代的hsc-t6培养于含10%胎牛血清、100u/ml青霉素、100mg/ml链霉素和1%neaa的high-dmem培养液中,置于37
8、℃、5%co2、饱和湿度的细胞培养箱中培养;在倒置显微镜下观察细胞长到亚单层或细胞密度约80%~90%时,是hsc-t6传代的标志;吸弃培养基,加入0.25%胰蛋白酶1~2ml,37℃消化2~3min,待细胞回缩,瓶壁有少量细胞脱落,即用含血清培养基终止;收集细胞悬液于50ml消毒离心管中,1700r/min,4℃离
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