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时间:2018-05-04
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1、兔骨髓基质干细胞与软骨细胞共培养体内成软骨的实验观察作者:倪云峰,李小飞,刘源,雷战军,卢强【关键词】软骨细胞Experimentalstudyonchondrogenesisbycocultureofrabbitmesenchymalstemcellsandchondrocytes 【Abstract】AIM:Toexplorethefeasibilityofinvivochondrogenesisbycocultureofmesenchymalstemcells(MSCs)andchondrocytes.METHODS:RabbitMSCsandchond
2、rocytesixedataratioof3∶1(MSCs∶chondrocytes).Themixedcellsateconcentrationof6.0×1010/Lascoculturegroup.MSCsandchondrocytesofthesameultimateconcentrationensaintaintheoriginalsizeandshapeduringinvivocultureandformedhomogenousmaturecartilageafter8ore,theneocartilagesinbothgroupsilartoeac
3、hotheringrossappearanceandhistologicalfeatures.Innegativecontrolgroup,thecartilageedbuttheconnectivetissue.CONCLUSION:ChondrocytescanprovideachondrogenicmicroenvironmenttoinduceachondrogenicdifferentiationofMSCsandthuspromotethechondrogenesisofMSCsinvivo. 【Keyesenchymalstemcells,MSC
4、s)是一类具有多向分化潜能的干细胞,在体外特定的诱导条件下可分化为骨、软骨等组织[3-4].诱导因子及软骨微环境是影响MSCs成软骨分化及软骨形成的主要因素.我们利用少量软骨细胞,通过共培养方法诱导MSCs在体内形成成熟的软骨组织,为进一步的实验研究提供理论依据. 1材料和方法 1.1材料新西兰兔15只,5~6mo龄,雌雄不限,体质量(2.5±0.5)kg;新生新西兰兔2只(第四军医大学实验动物中心);DMEM培养液、胎牛血清(Gibco);胰蛋白酶(Sigma);II型胶原酶(Promega);PGA(上海易括公司);倒置显微镜(IX71,Olympus)
5、;CO2孵箱(日本三洋,MCO175型). 1.2方法 1.2.1兔MSCs的分离培养将出生1~3d的新西兰兔处死,无菌操作下取其四肢的长骨,用注射器抽取长骨内骨髓,加含100mL/L胎牛血清的DMEM培养基吹打制成单细胞悬液,分装于2个25mL培养瓶中,取少量细胞计数.在37℃,5mL/LCO2及饱和湿度条件下静止培养5d.第6日首次细胞换液,以后每2~3日换液1次.待第10~14日贴壁细胞长满瓶底部后用2.5g/L胰蛋白酶和1mL/LEDTA的混合溶液消化并传代培养细胞. 1.2.2兔软骨细胞的分离与培养将出生1~3d的新西兰兔处死,在无菌操作下从其四
6、肢的关节中取出软骨,将软骨切成1~3mm3大小置无菌试管,PBS冲洗3次,800r/min离心3min,吸去PBS,加2g/L胰酶4mL,置5mL/LCO2孵箱30min,吸出胰酶后再加入2g/LII型胶原酶5mL,置孵箱内消化6~8h.观察大部分软骨块被消化后,收集消化液,800r/min离心3min,用培养液洗2次.细胞记数后移入25mL培养瓶中,使细胞密度为2×104/L,加DMEM培养液(含100mL/L胎牛血清,1×105U/L青霉素,50mg/L维生素C,0.15g/L谷氨酰胺),于37℃,5mL/LCO2孵箱中培养,每2日换液1次.原代细胞贴壁并融
7、合成单层后传代培养. 1.2.3聚羟基乙酸(PGA)支架的处理PGA无纺网支架材料的纤维直径15μm,平均间距150~200μm,孔隙率97%,厚2mm.将PGA支架切成5mm×5mm大小,750mL/L乙醇浸泡12h,无菌PBS冲洗3遍,放入90mm无菌培养皿中干燥,用前用紫外线照射30min. 1.2.4细胞与PGA支架的复合将MSCs与软骨细胞按3∶1比例混匀,调整细胞密度为6.0×1010/L.将混合细胞、软骨细胞及MSCs分别接种于经培养液预湿的塑形PGA上,以细胞悬液刚好不溢出材料为宜.在37℃,5mL/LCO2,饱和湿度培养箱中孵育4h,然后在
8、复合物周围滴加含100m
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