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时间:2018-05-02
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1、低浓度H2O2对HL┐60细胞增殖的影响 摘要:目的探讨低浓度H2O2对同步化处理或未经处理的HL-60细胞作用的时间效应关系.方法将培养的HL-60细胞进行同步化处理或取对数生长期细胞,施加不同浓度梯度的H2O2影响,作细胞计数,四唑盐(MTT)比色试验检测细胞生存率,流式细胞技术测定细胞周期分布.结果低浓度H2O2作用组HL-60活细胞数明显高于未施加影响组,尤以H2O2终浓度为2μmolL-1组作用明显(P<0.01),细胞周期也有轻度改变.结论低浓度H2O2作用HL-60细胞可使细胞数增
2、加,其影响有时间效应关系,机制可能同其影响细胞周期有关. Keyia,promyelocylic,a-cute;cellcycle Abstract:AIMToinvestigatetheeffectsofhydrogenper-oxideonhumanleukemiccells(HL-60)invitro,andillus-trateitspossiblemechanism.METHODSCultivatedHL-60cellsofsynchronizationornon-synchronizat
3、ionberoflivingcellseasuredbyMTTmethods.Cellcycledistributionetry.RESULTS-paredberofHL-60cellsaf-fectedbyloolL-1arkable.Thecellcyclechangedslightly.CONCLU┐SIONLoberofHL-60livingcells.Itsmainmechanismmightprobablybeinvolvedinthechangeofthecellcycle. 0引言
4、关于自由基、活性氧对机体损害的机制一直是研究热点.自从1981年美国学者LarryTT)购自华美生物有限公司. 1.2方法 1.2.1细胞培养 HL-60细胞常规培养,培养液为含100mLL-1小牛血清,青、链霉素各1×105uL-1的RPMI-1640,隔天换液. 1.2.2细胞计数测细胞存活率 取对数生长期细胞,置4℃冰箱4h,使细胞低温同步化后取出,立即施加不同浓度梯度的H2O2溶液,浓度范围0.1μmolL-1至10mmolL-1,设阴性对照,37℃温育.取处理后不同时间点终止培养,4
5、gL-1台盼蓝溶液染色,计数活细胞和细胞总数. 1.2.3四唑盐(MTT)比色法检测细胞活力 取对数生长期细胞,调整细胞密度为5×105mL-1,以每孔0.2mL接种96孔板,共五板,37℃,50mLL-1CO2孵育.次日晨每板分12个组,每组8个平行孔,按不同终浓度分别加入H2O2溶液,浓度梯度如下:0.01,0.1,1,2,5,10,20,50,100,1000μmolL-1,无H2O2组,单纯培养基组.五块板分别于0,1,2,3,4d取出,加5gL-1MTT溶液20μL/孔,37℃温育4h后吸
6、取上清,加二甲基亚砜(EMSO分析纯)150μL,震荡10min,使紫色结晶物充分溶解,用酶联免疫计数仪,波长为490nm,测定各孔吸光度. 1.2.4细胞周期DNA分布测定 取对数生长期细胞,无血清培养液培养24h使细胞同步化,离心去除无血清培养基,加入含100mLL-1小牛血清的1640培养基,稀释细胞密度为5×105mL-1,分别加入12孔板,每孔容积为2mL.取6孔各施加终浓度为2μmolL-1的H2O2溶液,另6孔各加入等体积三蒸水.37℃,50mLL-1CO2孵育,于不同时间点(0,2,
7、6,12,18,24h)同时取施加影响组和阴性对照组各一孔细胞,置两只离心管中以800rmin-1离心5min,PBS洗两次,弃上清,700mLL-1乙醇固定,4℃存放待测.测定时离心去上清,PBS洗涤2次,加入碘化丙啶,避光染色15min,FACSPLUS流式细胞仪进行细胞周期测定.统计方法:结果以本校卫生统计学教研室统计软件SPLM作重复测量方差分析[5]. 2结果 2.1细胞计数 低浓度剂量H2O2(1μmolL-1)作用HL-60细胞后,光镜下观察见细胞外形规则,边缘光滑,折光性好,死亡细
8、胞很少,增殖活跃,活细胞数明显较空白对照组多;中等浓度剂量H2O2(100μmolL-1)作用HL-60细胞后,3h可见少许变形细胞,外形不规则,有长条形状,细胞轮廓尚在,可见一些细胞碎片,12h活细胞数降至最低点,后开始逐渐恢复;高浓度剂量H2O2(5mmolL-1)作用HL-60细胞后,细胞大量死亡,胞膜不完整,仅见细胞轮廓,出现大量细胞碎片,台盼蓝溶液染色见细胞均为蓝染,12h后细胞全部死亡.72h后三组活细胞数均开始下降(Fig1)
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